2006, Número 2
Evaluación in silico de un novedoso chip de DNA basado en tecnología de huella genómica para identificación viral
Idioma: Ingles.
Referencias bibliográficas: 40
Paginas: 56-65
Archivo PDF: 182.67 Kb.
RESUMEN
En este trabajo se evaluó, “in silico”, la identificación de organismos por medio de su huella genómica. Las secuencias genómicas de 94 HPVs se sometieron a hibridación virtual sobre un chip de DNA que contiene 342 sondas. Este Sensor Universal de Huella Genómica o UFC está integrado por un conjunto de sondas representativo de todas las secuencias posibles de 8 nucleótidos de longitud que contienen al menos dos diferencias, internas y espaciadas, entre todas ellas. El análisis de hibridación virtual permitió calcular las huellas genómicas que representan las señales producidas por la hibridación de las sondas permitiendo a lo mucho una base no apareada. Las huellas genómicas fueron comparadas entre sí para obtener mediciones de distancias entre todos los pares posibles. Se utilizó una técnica de extensión del alineamiento para considerar solo las señales compartidas por dos genomas correspondientes a la hibridación de las sondas contra sitios homólogos. Se construyó un árbol filogenético a partir de las distancias entre las huellas genómicas utilizando el algoritmo Neighbor-Joining del programa Phylip 3.61. Este árbol fue comparado con el obtenido a partir del alineamiento de los genomas completos de HPV obtenido con el programa Clustal_X 1.83. La similitud entre los árboles obtenidos por ambos métodos sugiere que el UFC-8 es capaz de discriminar con precisión los genomas virales. El análisis comparativo de las huellas genómicas indica que el UFC-8 es capaz de distinguir los tipos y subtipos de HPV.REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Coutlee F, Rouleau D, Petignat P, Ghattas G, Kornegay JR, Schlag P, Boyle S, Hankins C, Vezina S, Cote P, Macleod J, Voyer H, Forest P, Walmsley S, Franco E. 2006. Enhanced Detection and Typing of Human Papillomavirus (HPV) DNA in Anogenital Samples with PGMY Primers and the Linear Array HPV Genotyping Test. J Clin Microbiol. 44(6):1998-2006.
Han CS, Xie G, Challacombe JF, Altherr MR, Bhotika SS, Bruce D, Campbell CS, Campbell ML, Chen J, Chertkov O, Cleland C, Dimitrijevic M, Doggett NA, Fawcett JJ, Glavina T, Goodwin LA, Hill KK, Hitchcock P, Jackson PJ, Keim P, Kewalramani AR, Longmire J, Lucas S, Malfatti S, McMurry K, Meincke LJ, Misra M, Moseman BL, Mundt M, Munk AC, Okinaka RT, Parson-Quintana B, Reilly LP, Richardson P, Robinson DL, Rubin E, Saunders E, Tapia R, Tesmer JG, Thayer N, Thompson LS, Tice H, Ticknor LO, Wills PL, Brettin TS, Gilna P. 2006. Pathogenomic Sequence Analysis of Bacillus cereus and Bacillus thuringiensis Isolates Closely Related to Bacillus anthracis. J Bacteriol. 188(9):3382-3390.
Sandri MT, Lentati P, Benini E, Dell’orto P, Zorzino L, Carozzi FM, Maisonneuve P, Passerini R, Salvatici M, Casadio C, Boveri S, Sideri M. 2006. Comparison of the Digene HC2 Assay and the Roche AMPLICOR Human Papillomavirus (HPV) Test for Detection of High-Risk HPV Genotypes in Cervical Samples. J Clin Microbiol. 44(6):2141-6.
Zimmer K, Drager KG, Klawonn W, Hess RG. 1999. Contribution to the diagnosis of Johne’s disease in cattle. Comparative studies on the validity of Ziehl-Neelsen staining, faecal culture and a commercially available DNA-Probe test in detecting Mycobacterium paratuberculosis in faeces from cattle. Zentralbl Veterinarmed B. (2):137-140.