Martínez-Ramos A, Isibasi A

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 23
Paginas: 97-101
Archivo PDF: 82.21 Kb.

RESUMEN

Antecedentes. El lipopolisacárido (LPS) de diversas bacterias gram negativas tiene influencia sobre su virulencia y su susceptibilidad o resistencia al suero humano normal. Entre otras funciones al LPS se le ha atribuido la de proteger a dichas bacterias contra el efecto bactericida del suero humano normal (SHN). Objetivo. Purificar los LPSs de dos cepas de Klebsiella pneumoniae una susceptible y otra resistente al efecto bactericida del SHN, hacer un análisis de su composición química y establecer la influencia que puedan tener sobre la actividad letal del SHN. Material y métodos. Se purificaron los LPS de las cepas y se les determinó su contenido de carbohidratos, de KDO de ácidos grasos y su influencia sobre el efecto bactericida del suero humano normal. Resultados. Se determinaron pequeñas diferencias en la composición química de los dos LPSs las cuales fueron más cuantitativas que cualitativas. Los LPSs purificados mostraron un efecto protector del 100% contra la actividad bactericida del suero. Conclusiones. Desde el punto de vista de su composición química los LPSs purificados fueron, en general, muy parecidos entre sí. Se determinó la capacidad del LPS de proteger a la cepa sensible contra la actividad bactericida del suero humano normal.

REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

1. Whitfield C, Richards JC, Perry MB, Clarke BR, MacLean LL. Expression of two structurally distinct D. Galactan O-antigens in the lipopolysaccharide of Klebsiella pneumoniae serotype O1. J Bacteriol 1991;173:1420-1431.

2. Pavlovich NV, Sorokin VM, Blagorodova NS. The resistance of Francisella tularencis to the bactericidal action of normal serum as criterion for evaluating the virulence of the bacterium. Zh Mikrobiol Epidemiol 1996;1:7-10.

3. Schiller NL. Characterization of the susceptibility of Pseudomonas aeruginosa to complement-mediated killing: role of antibodies to the rough lipopolysaccharide on serum-sensitive strains. Infect Immun 1988;56:632-639.

4. Ciurana B, Tomas JM. Role of lipopolysaccharide and complement in susceptibility of Klebsiella pneumoniae to nonimmune serum. Infect Immun 1987;55: 2741-2746.

5. Pérez-Pérez GI, Blaser MJ. Lipopolysaccharide characteristics of pathogenic Campylobacters. Infect Immun 1985;47:353-359.

6. Cervi BM, Monetto AM. Behaviour of Acinetobacter strains with normal human serum. Cent Eur J Public Health 1996;4(3): 197-200.

7. Martínez RA, Capetillo PMC. Caracterización de una variante de Klebsiella pneumoniae resistente al suero humano normal, derivada de la cepa sensible. Enfermedades Infecciosas y Microbiología 1997;17(4):113-120.

8. Westphal O, Jann J. Bacterial lipopolysaccharide extraction with phenol-water and further applications of the procedure. Methods in Carbohydrate Chemistry. Acad Press NY USA 1967;5:83-91.

9. Darveau RP, Hanckock RE. Procedure for isolation of bacterial lipopolysaccharides from both smooth and rough Pseudomonas aeruginosa and Salmonella typhimurium strains. J Bacteriol 1983;155(2):831-838.

10. Dubois M, Gilles KA, Jamilton JK, Roberts PA, Smith F. Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Anal Chem 1956;28:350.

11. Karkanis YD, Zeltner JY, Jackson JJ, Carlo DJ. A new improved microassay to determine 2-keto-3-deoxioctonate in lipopolysaccharide of Gram-negative bacteria. Anal Biochem 1978;85:595-601.

12. Martínez RA, Williams RP. Filtrados de cultivos de Neisseria gonorrhoeae GC-9(T4) que la protegen del efecto bactericida del suero humano normal. Enfermedades Infecciosas y Microbiología 1996;16(6):246-254.

13. González VG, Pérez-Pérez GI, Washburg RG, Blaser MJ. Susceptibility of Helicobacter pylori to the bactericidal activity of human serum. Helicobacter 1996;1(1):28-23.

14. Jankowski S, Grzybek-Hryncenwicz K, Fleischer M, Walczuk M. Susceptibility of isolates of Acinetobacter anitratus and Acinetobacter lwoffii to the bactericidal activity of normal human serum. FEMS Microbiol Immunol 1992;4:255-260.

15. Sorokin VM, Pavlovich NV, Prozorova LA. Francisella tularensis resistance to bactericidal action of normal human serum. FEMS Immunol Med Microbiol 1996;13(3): 249-252.

16. Taylor PW. Bactericidal and bacteriolytic activity of serum against Gram-negative bacteria. Microbiol Revs 1983;47:46-83.

17. Altman E, Brisson JR, Perry MB. Structure of the O-antigen polysaccharide of Haemophilus pleuropneumoniae serotype 3 (ATCC 27090) lipopolysaccharide. Carbohydr Res 1988;15: 245-258.

18. Kol O, Wieruszeski JM, Strecker G, Montreuil J, Fournet B, Zalisz R, Smets P. Structure of the O-specific polysaccharide chain from Klebsiella pneumoniae 01K2 (NCTC 5055) lipopolysaccharide. Carbohydr Res 1991;18:117-125.

19. Richards JC, Leitch RA. Elucidation of the structure of the Pasteurella haemolytica serotype T10 lipopolysaccharide O-antigen by n.m.r. spectroscopy. Carbohydr Res 1989;186:275-286.

20. Stukalova NV, Karabat VI, Aleksakhina NN, Basnakian IA, Miriasova LV. The isolation and study of lipopolysaccharide from Klebsiella pneumoniae vaccinal strain 204. Zh Mikrobiol Epidemiol Immunobiol 1997;1:39-42.

21. Whitfield C, Perry MB, MacLean LL, Yu SH. Structural analysis of the O-antigen side chain polysaccharide in the lipopolysaccharides of Klebsiella serotypes O2(2a), O2(2a,2b) and O2(2a,2c). J Bacteriol 1992;174:4913-4919.

22. Joiner KA. Complement evasion by bacteria and parasites. Ann Rev Microbiol 1988;42:201-230.

23. Kumar S, Mathur MD. Sensitivity to the bactericidal effect of human serum of Proteus strains from clinical specimens. Indian. J Pathol Microbiol 1997;40(3):335-338.