2022, Número 1
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Biotecnol Apl 2022; 39 (1)
Descubrimiento de ferroquelatasa 1 en Nicotiana tabacum L.: papel en la respuesta al estrés abiótico y el desarrollo de las plantas
Ortega-Rodés P, Grimm B, Hedtke B, Ortega DE, Fan T, Rodés GR, Pernús AM, Hey D, FGL, Brings L, Roling L, Schnurrer F, Meiers A, Alawady A
Idioma: Ingles.
Referencias bibliográficas: 35
Paginas: 1511-1516
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RESUMEN
Cuba está amenazada por el Cambio Climático. En la fisiología de las plantas participan enzimas que actúan como escudo al estrés oxidativo, siempre asociado a la salinidad, el déficit o exceso hídrico y las temperaturas extremas; esas enzimas tienen Hemo como cofactor. Hemo es un tetrapirrol, semejante a clorofila, pero con Fe en lugar de Mg como átomo central. El objetivo fue investigar la respuesta asociada al hemo en plantas de tabaco bajo estrés salino, hídrico y de temperatura, junto a la planta modelo Arabidopsis thaliana. Se reportó, en tejidos de tabaco, por primera vez para la ciencia, la presencia, de la enzima Ferroquelatasa 1 (responsable de quelar el hierro al tetrapirrol). Las plantas tienen dos isoformas de Ferroquelatasas (FC1 y FC2). La mutación para el gen de la Ferroquelatasa 1, en la planta modelo, resultó letal para los embriones. Al comparar los niveles de ARNm de FC1 y FC2 en embriones de plantas tipo salvaje, se demostró que FC1 es la isoforma predominante durante la maduración del embrión. Por lo tanto, la regulación de la expresión de FC en tiempo y espacio durante la embriogénesis, es prerrequisito para el adecuado desarrollo del embrión. Se concluye que el hemo producido por FC1, es esencial para la embriogénesis además de las respuestas al estrés. Líneas antisentido para FC1 tuvieron fenotipo de floración temprana en día corto; esto hizo que por primera vez se estableciera una relación del hemo producido por FC1 con el proceso de la floración, deduciéndose así que el Hemo producido por FC1 es importante en el metabolismo reproductivo. Estos conocimientos en manos de mejoradores, pudieran servir para obtener cultivares productivos con capacidad de aclimatación a los estreses abióticos asociados al cambio climático, lo que potencialmente nos daría alguna ventaja para mitigar sus efectos. El trabajo ha estimulado el intercambio científico con Alemania. Los resultados son incluidos como técnicas pedagógicas para la enseñanza de métodos modernos de biología molecular, en la formación de alto nivel de científicos jóvenes cubanos y latinoamericanos en la UH, en las 5 ediciones del curso conjunto “Basic methods in plant molecular biology and plant physiology” con la Universidad Humboldt de Berlín. Este trabajo mereció el Premio Anual de la Academia de Ciencias de Cuba para el año 2020.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
González Núñez LM, Tóth T, García D.Integrated management for the sustainableuse of salt-affected soil in Cuba. Universidady Ciencia. 2004;20(40):85-102.
García M, Díaz AL, Valdés MA. Elmejoramiento de los suelos: una experienciadesde la agroecología en laCooperativa de Producción Agropecuaria“Celso Maragoto Lara”. Revista Científica.2014;16(4):317-28.
Ortega F, Obregon A, Hernández A,Borreto M, editors. Los suelos salinos ysalinizados de Cuba. Resúmenes de lasActas del Primer Seminario Científico dePedología para la región de Centroaméricay el Caribe: Suelo y Agua; La Habana;1985.
Roháček K, Soukupová J, Barták M.Chlorophyll fluorescence: A wonderful toolto study plant physiology and plant stress.In: Schoefs B, editor. Plant Cell Compartments.Kerala: Research Signpost; 2008;p. 41-104.
Tanaka R, Tanaka A. Tetrapyrrole biosynthesisin higher plants. Annu Rev PlantBiol. 2007;58:321-46.
Fan T, Grimm B, Layer G. Porphyrin andheme synthesis. Adv Bot Res. 2019;91:89-131.
Woodson JD, Perez-Ruiz JM, Chory J.Heme synthesis by plastid FerrochelataseI regulates nuclear gene expression inplants. Curr Biol. 2011;21:897-903.
Papenbrock J, Mishra S, Mock H-P,Kruse E, Schmidt EK, Petersmann A, et al.Impaired expression of the plastidic ferrochelataseby antisense RNA synthesis leadsto a necrotic phenotype of transformedtobacco plants. Plant J. 2001;28:41-50.
Hoagland DR, Arnon DI. The waterculturemethod for growing plants withoutsoil. California Agricultural ExperimentStation Circular. 1950;347:1-32.
Sharma P, Bhardwaj R, Arora N,Arora HK. Effect of 28-homobrassinolideon growth, Zn metal uptake and antioxidativeenzyme activities in Brassicajuncea L. seedlings. Braz J Plant Physiol.2007;19:203-10.
Kato M, Shimizu S. Chlorophyll metabolismin higher plants. VII. Chlorophylldegradation in senescing tobacco leaves;phenolic- dependent peroxidative degradation.Can J Bot. 1987;65:729-35.
Papenbrock J, Mock H-P, Kruse E,Grimm B. Expression studies in tetrapyrrolebiosynthesis: inverse maxima ofmagnesium chelatase and ferrochelataseactivity during cyclic photoperiods. Planta.1999;208:264-73.
Edwards K, Johnstone C, Thompson C.A simple and rapid method for the preparationof plant genomic DNA for PCR analysis.Nucleic Acids Res. 1991;19(6):1349.
Schmittgen TD, Livak KJ. Analyzingreal-time PCR data by the comparative CTmethod. Nat Protocols. 2008;3(6):1101-8.
Livak KJ, Schmittgen TD. Analysis of relativegene expression data using real-timequantitative PCR and the 2(-Delta DeltaC(T)) method. Methods. 2001;25(4):402-8.
Horsch RB, Fry JE, Hoffman NL, EichholtzSG, Rogers SG, Fraley RT. A simpleand general method for transferring genesinto plants. Biol Sci. 1985;221:1229-31.
Sudhir P, Murthy SDS. Effects of saltstress on basic processes of photosynthesis.Photosynthetica. 2004;42(4):481-6.
Clough SJ, Bent AF. Floral dip: a simplifiedmethod for Agrobacterium-mediatedtransformation in Arabidopsis thaliana.Plant J. 1998;16(6):735-43.
Tamura K, Peterson D, Peterson N,Stecher G, Nei M, Kumar S. MEGA5:Molecular evolutionary genetics analysisusing maximum likelihood, evolutionarydistance, and maximum parsimony methods.Mol Biol Evol. 2011;28(10):2731-9.
Banks JA, Nishiyama T, Hasebe M,Bowman JL, Gribskov M, dePamphilisC, et al. The Selaginella genome identifiesgenetic changes associated with theevolution of vascular plants. Science.2011;332(6032):960-3.
Soderlund C, Descour A, KudrnaD, Bomhoff M, Boyd L, Currie J, et al.Sequencing, mapping, and analysis of27,455 maizes full-length cDNAs. PLOSGenetics. 2009;5(11):e1000740.
Schnable PS, Ware D, Furton RS, SteinJC, Wei F, Pasternak S, et al. The B73 maizegenome: complexity, diversity, and dynamics.Science. 2009;326(5956):1112-5.
Kang K, Lee K, Park S, Lee S, Kim YS,Back K. Overexpression of rice ferrochelataseI and II leads to increased susceptibility tooxyfluorfen herbicide in transgenic rice. JPlant Biol. 2010;53:291-6.
Suzuki T, Masuda T, Singh DP, Tan F-C,Tsuchiya T, Shimada H, et al. Two types offerrochelatase in photosynthetic and nonphotosynthetictissues of cucumber. Theirdifference in phylogeny, gene expression,and localization. J Biol Chem. 2002;227:4731-7.
Chow KS, Singh DP, Walker AR, Smith AG.Two different genes encode ferrochelatase inArabidopsis: mapping, expression and subcellulartargeting of the precursor protein. PlantJ. 1998;15:531-41.
Alawady A, Alawady A, Ortega P, GrimmB. Nicotiana tabacum ferrochelatase isoformI mRNA, complete cds; plastid [GenBank AccessionNumber JF428143.1]. 2016.
Ortega-Rodes P, Grimm B, Ortega E. Evolutionary,physiological and biotechnologicalaspects of ferrochelatase and heme in higherplants. Biotecnol Apl. 2014;31(3):176-186.
Hey D, Ortega-Rodés P, Fan T, Schnurrer F,Brings L, Hedtke B, et al. Transgenic tobaccolines expressing sense or antisense FERROCHELATASE1 RNA show modified Ferrochelataseactivity in roots and provide experimentalevidence for dual localization of Ferrochelatase1. Plant Cell Physiol. 2016;57(12):2576-85.
Ortega-Rodés P. Ferrochelatase 1 andheme in Nicotiana tabacum: their relatioshipwith stress physiology [PhD thesis].La Habana: Universidad de la Habana;2014.
Papenbrock J, Grimm B. Regulatorynetwork of tetrapyrrole biosynthesis of intracellularsignaling involved in metabolic anddevelopmental control of plastids. Planta.2001; 213:667-81.
Porra RJ, Lascelles J. Studies of ferrochelatase.The enzymatic formation ofhaem in proplastids, chloroplasts and plantmitochondria. Biochem J. 1968;108:343.
Smith AG, Santana MA, Wallace-CookADM, Roper JM, Labbe-Bois R. Isolation ofa cDNA encoding chloroplast ferrochelatasefrom Arabidopsis thaliana by functionalcomplementation of a yeast mutant. J BiolChem. 1994;269:13405-13.
Chow K, Singh DP, Roper JM, SmithAG. A single precursor protein for Ferrochelatase-I from Arabidopsis is importedin vitro into both chloroplasts and mitochondria.J Biol Chem. 1997;272(44):27565-71.
Fan T, Roling L, Meiers A, Brings L, Ortega-Rodés P, Hedtke B, et al. Complementationstudies of the Arabidopsis fc1 mutant substantiateessential functions of ferrochelatase1 during embryogenesis and salt stress. PlantCell Environ. 2019;42(2):618-632.
Borisjuk L, Rolletschek H. The oxygenstatus of the developing seed. New Phytol.2009;182:17-30.