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ISSN 1028-4796 (Impreso)

2020, Número 1

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Rev Cubana Plant Med 2020; 25 (1)


Efecto del extracto de las hojas de Carica Papaya L. (papaya) sobre el daño hepático inducido por paracetamol

Lauani BL, Dornelles GSV, Sinhorin AP, Sartori PN

Idioma: Portugués
Referencias bibliográficas: 42
Paginas: 1-13
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RESUMEN

Introducción: El extracto de las hojas de Carica papaya L. (papaya) es bien conocido por tener propiedades antioxidantes. Sus hojas presentan compuestos fenólicos, alcaloides, vitaminas y minerales.
Objetivo: Evaluar el efecto del extracto acuoso de las hojas de papaya (500 mg/kg) en los ratones sometidos al estrés oxidativo inducido por paracetamol.
Métodos: Las hojas fueron seleccionadas, secadas, molidas y sometidas a extracción por infusión con agua destilada a 70 °C/1h. La solución se filtró y se concentró por evaporación rotacional a 70 ºC. Los ratones suizos machos recibieron una dosis única de 250 mg/kg de paracetamol o de agua, después de 3h. Los animales fueron tratados durante 7 días con extracto o agua. 24 horas después del tratamiento, se extrajo sangre y los animales se sacrificaron para retirar el hígado y se sometieron a los siguientes análisis: carbonilación de proteínas, sustancias reactivas al ácido tiobarbitúrico (lipoperoxidación), catalasa, superóxido dismutasa, glutatión-S-transferasa, glutatión reducido, ácido ascórbico y parámetros bioquímicos de plasma (transaminasas, fosfatasa alcalina, glucosa y colesterol).
Resultados: El extracto revirtió el daño causado por el paracetamol a la actividad de la glutatión-S-transferasa, la carbonilación de proteínas y la lipoperoxidación, además de restaurar la actividad de las transaminasas. El extracto por sí redujo la glutatión-S-transferasa y el ácido ascórbico, los niveles séricos de glucosa, colesterol y alanina aminotransferasa.
Conclusión: El extracto acuoso de las hojas de papaya es capaz de ejercer importantes acciones con efectos antioxidantes, sin embargo, es necesario el desarrollo de nuevas investigaciones a fin de describir más detalladamente sobre su probable potencial antioxidante.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Brasil. Ministério da Saúde. A Fitoterapia no SUS e o Programa de Pesquisa de Plantas Medicinais da Central de Medicamentos. BVSMS. Brasília; 2006 [acceso: 23/05/2016]. Disponible en: http://bvsms.saude.gov.br/bvs/publicacoes/fitoterapia_no_sus.pdf

  2. Brandão MGL, Souza PJ, Grael CFF, Scalco V, Santos ACP, Salimenha MF, et al. Biodiversidade, uso tradicional de plantas medicinais e produção de fitoterápicos em Minas Gerais. In: Anais do XIV Seminário sobre a Economia Mineira. Cedeplar, Universidade Federal de Minas Gerais; 2010. p. 1-10.

  3. Alberto FS, Pires S, Figueiredo A, Deus JR. Insuficiência Hepática Aguda. Acta Med Port. 2009;22:809-20.

  4. Sebben VC, Lugoch RW, Schlinker CS, Arbo MD, Vianna RL. Validação de metodologia analítica e estudo de estabilidade para quantificação sérica do paracetamol. J Bras Patol Med Lab. 2010;46(2):143-48.

  5. Silva P. Farmacologia. 7a edição. Rio de Janeiro: Editora Guanabara Koogan; 2006.

  6. James LP, Letzig L, Simpson PM, Capparelli E, Roberts DW, Hinson JA, et al. Pharmacokinetics of acetaminophen-protein adducts in adults with acetaminophen overdose and acute liver failure. Drug Metab Disp. 2009;37(8):1779-84.

  7. Turolla RSM, Nascimento SE. Informações toxicológicas de alguns fitoterápicos utilizados no Brasil. Rev Bras Cienc Farm. 2006 [acceso: 23/05/2016];42(2):289-06. Disponible en: http://www.scielo.br/scielo.php?script = sci_arttext&pid = S151693322006000200015&lng = en&nrm = iso

  8. Cechinel Filho V, Yunes RA. Estratégias para obtenção de compostos farmacologicamente ativos a partir de plantas medicinais, conceitos sobre modificação para otimização da atividade. Quím Nova. 1998 [acceso: 23/05/2016];21(1):99-105, http://www.scielo.br/scielo.php?script = sci_arttext&pid = S010040421998000100015&lng = en&nrm = iso

  9. Santos DHP. Produtos alternativos no controle de doenças fúngicas em folha e fruto de mamoeiro [dissertação]. Centro de Ciências e Tecnologias Agropecuárias. Rio de Janeiro, 2013 [acceso: 23/05/2016]. Disponible en: http://www.uenf.br/Uenf/Downloads/PRODVEGETAL_3434_1372870415.pdf

  10. Konno K, Hirayama C,Nakamura M, Tateishi K, Tamura Y, Hattori M, et al.Papain protects papaya trees from herbivorous insects: role of cysteine proteases in latex. Plant J. 2004;37:370-78.

  11. Nguyen TT, Parat MO, Shaw PN, Hewavitharana AK, Hodson MP. Traditional aboriginal preparation alters the chemical profile of Carica papaya leaves and impacts on cytotoxicity towards human squamous cell carcinoma. PLoS One. 2016:11(2):e0147956.

  12. Bridge M, Montero GD, Valladares MB, Katawera V, Nkwangu D, Noah JOO. Antibacterial effect of crude methanol Carica papaya L. (papaya) extract and amoxicillin combination. Rev Cubana Plant Med. 2015 [acceso: 23/05/2016];20(4). Disponible en: http://www.revplantasmedicinales.sld.cu/index.php/pla/article/view/246

  13. Tan SA, Ramos S, Martin MA, Mateos R, Harvey M, Ramanathan S, et al. Protective effects of papaya extracts on tert-butyl hydroperoxide mediated oxidative injury to human liver cells (an in-vitro study). Free Rad Antiox. 2012;2(3):10-19.

  14. Adeolu AA, Eguonor V. Antinociceptive and anti-inflammatory studies of the aqueous leaf extract of Carica papaya in laboratory animals. Asian J Exp Biol Sci. 2013;4(1):89-96.

  15. Okoko T, Ere D. Reduction of hydrogen peroxide-induced eryth-rocyte damage by Carica papaya leaf extract. Asian Pac J Trop Biomed. 2012;2(6):449-53.

  16. Nugroho A, Heryani H, Choi JS, Park H. Identification and quantification of flavonoids in Carica papaya leaf and peroxynitrite-scavenging activity. Asian Pac J Trop Biomed. 2017;7(3):208-13.

  17. Olaleye MT, Rocha BTJ. Acetaminophen-induced liver damage in mice: effects of some medicinal plants on the oxidative defense system. Exp Toxicol Pathol. 2008;59(5):319-27.

  18. Halim SZ, Abdullah NR, Afzan A, Abdul Rashid BA, Jantan I, Ismail Z. Acute toxicity study of Carica papaya leaf extract in Sprague Dawley rats. J Med Plant Res. 2011;5(10):1867-72.

  19. Misra HP, Fridovich I. The role of superoxide anion in the auto-oxidation o epinephrine and a simple assay for superoxide dismutase. J Biol Chem. 1972;247:3170-75.

  20. Nelson DP, Kiesow LA. Enthalphy of decomposition of hydrogen peroxide by catalase at 25 °C (with molar extinction coefficients of H2O2 solution in the UV). Anal Biochem. 1972;49:474-78.

  21. Habig WH, Pabst MJ, Jacoby WB. Glutathione S-transferase, the first enzymatic step in mercapturic acid formation. J Biol Chem. 1974;249(22):7130-39.

  22. Sedlack J, Lindsay RH. Estimation of total, protein-bound, and nonprotein sulfhydryl groups in tissue with Ellman’s reagent. Anal Biochem. 1968;25(1):192-205.

  23. Roe JH. Chemical determination of ascorbic, dehydroascorbic, and diketogulonic acids, In Methods of Biochemical Analysis, Glick, D. New York: Interscience; 1954(1):115.

  24. Buege JA, Aust SD. Microsomal lipid peroxidation. Methods Enzymol. 1978;52:302-10.

  25. Yan LJ, Traber MG, Packer L. Spectrophotometric method for determination of carbonyls in oxidatively modified apolipoproteína B of human low-density lipoproteínas. Anal Biochem. 1995;228(2):349-351.

  26. Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantification of microgram quantities of proteína utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem. 1976;72:248-254.

  27. Ramachandra Setty S, Quereshi AA, Viswanath Swamy AH, Patil T, Prakash T, Prabhu K, et al. Hepatoprotective activity of Calotropis procera flowers against paracetamol-induced hepatic injury in rats. Fitoterapia. 2007;78(7):451-54.

  28. Hodgman MJ, Garrard AR. A Review of Acetaminophen Poisoning. Crit Care Clin. 2012;28(4):499-516.

  29. Fouad AA, Yacoubi MT, El-Bidawy MH. Therapeutic potential of hemin in acetaminophen nephrotoxicity in rats. Environ Toxicol Pharmacol. 2009;27(2):277-82.

  30. Awodele O, Yemitan O, Ise PU, Ikumawoyi VO. Modulatory potentials of aqueous leaf and unripe fruit extracts of Carica papaya Linn. (Caricaceae) against carbon tetrachloride and acetaminophen-induced hepatotoxicity in rats. J Intercult Ethnopharmacol. 2016;5(1):27-31.

  31. Gonçalves SE, Raskopf CJ, Minuzzo HR, Morgan-Martins MI, Marroni CA, Tunon MJ, et al. Efecto de la glutamina en el estrés oxidativo y la inflamación en un modelo de rata con insuficiencia hepática fulminante. Nutr Hosp. 2016;33(2):210-9.

  32. Pandit A, Sachdeva T, Bafna P. Ameliorative effect of leaves of Carica papaya in ethanol and antitubercular drug induced hepatotoxicity.Brit J Pharm Res. 2013;3(4):648-61.

  33. Azmi SMN, Jamal P, Amid A. Purification of Xanthine Oxidase Inhibitor from Carica papaya leaves using Reversed Phase Flash Column Chromatography (RPFCC) - High Performance Thin Layer Chromatography (HPTLC). Aust J. Basic Appl Sci. 2012;6(1):117-122.

  34. Ávila DS, Palma AS, Colle D, Scolari R, Manarin F, Silveira AF, et al.Hepatoprotective activity of a vinylic telluride against acute exposure to acetaminophen. Eur J Pharmacol. 2011;661(1):92-101.

  35. Letelier ME, López-Valladares M, Peredo-Silva L, Rojás-Sepúlveda D, Aracena P. Microsomal oxidative damage promoted by acetaminophen metabolism. Toxicol In Vitro. 2011;25(7):1310-1313.

  36. Abdalla DSP, Faine LA. Radicais livres e antioxidantes. In: Oga S, Camargo MMA, Batistuzzo JA. O. (Org.). Fundamentos de toxicologia. 3ª ed. Atheneu: São Paulo. 2008;1(4):38-58.

  37. Shanmugam S, Thangaraj P, Lima BS, Chandran R, Araújo AAS, Narain N, et al. Effects of luteolin and quercetin 3-β-D-glucoside identified from Passiflora subpeltata leaves against acetaminophen induced hepatotoxicity in rats. Biomed Pharmacother.2016;83:1278-85.

  38. Ayoola PB, Adeyeye A. Phytochemical and nutrient evaluation of Carica papaya (pawpaw) leaves. Int J Res Rev Appl Sci. 2010;5(3):325-28.

  39. Melo EA, Maciel MIS, Lima VLAG, Nascimento RJ. Capacidade antioxidante de frutas. Braz J Pharm Sci. 2008;44(2). Disponible en: http://www.journals.usp.br/rbcf/article/viewFile/44285/47906

  40. Juarez-Rojop IE, Tovilla-Zarate CA, Aguilar-Dominguez DE, Roa-De La Fuente LF, Lobato Garcia CE, Ble-Castillo JL, et al. Phytochemical screening and hypoglycemic activity of Carica papaya leaf in streptozotocin-induced diabetic rats. Rev Bras Farmacogn. 2014;24(3):341-7.

  41. Olagunju JA, Adeneyeb AA, Fagbohunka BS, Bisugac NA, Ketiku AO, Beneod AS, et al. Nephroprotective activities of the aqueous seed extract of Carica papaya L. in carbon tetrachloride induced renal injured Wistar rats: a dose- and time-dependent study. Biol Med. 2009;1(1):11-19. Disponible en: http://www.biolmedonline.com/Articles/vol1_1_11-19.pdf

  42. Nettina SM. Brunner prática de enfermagem. Rio de Janeiro: Editora Guanabara Koogan; 2012.




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