2017, Number 1
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Rev Cubana Plant Med 2017; 22 (1)
Antibacterial activity of total extract from leaves of Cucurbita moschata Duchesne (ahuyama)
del Castillo PA, Molinares MP, Campo UM, Bettin MA
Language: Spanish
References: 22
Page: 1-13
PDF size: 139.32 Kb.
ABSTRACT
Introduction: Cucurbita moschata Duchesne (ahuyama) is grown across America
as well as in the Middle East and Europe. It has been used as alternative medicine
since ancient times. In the northern section of the department of Bolívar, Colombia,
the plant is used by peasants to treat skin infections, hence our interest in
conducting this study.
Objective: Evaluate the antibacterial activity of total extract from leaves ofC.
moschata against Staphylococcus aureus, Klebsiella pneumoniae and Escherichia
coli.
Methods: Fresh leaves of C. moschata were classified taxonomically using standard
methods. The leaves were dried in an oven and pulverized in a blade mill.
Extraction was performed by cold solid-liquid percolation and concentration in a
rotary evaporator. Antibacterial activity of the ethanolic and hexanic extracts was
evaluated in vitro against methicillin-resistant Staphylococcus aureus, Escherichia
coli and Klebsiella pneumoniae, using the minimum inhibitory concentration (MIC)
method, in compliance with guidelines from the Clinical and Laboratory Standards
Institute (CLSI).
Results: The hexanic extract caused significant inhibition from dilution 0.16 μg/mL
for S. aureus strain ATCC 43300, and from dilution 19.5 μg/mL for strain ATCC
25923 (MSSA). The ethanolic and hexanic extracts significantly inhibited the growth
of the clinical E. coli strain, whereas no significant inhibition was observed for K.
pneumoniae at any of the concentrations tested.
Conclusions: For the first time it was shown that the total hexanic extract of
leaves of C. moschata had the greatest inhibition power against clinical strains of S.
aureus and E. coli. The antimicrobial potential of this native species from the
Colombian Caribbean has been recognized, and it is recommended to conduct
assays with a larger number of human pathogens.
REFERENCES
Vallejo A, Feitosa A, Gourlart AE, Pires LL, Mosquera OM. Tamizaje de acción antimicrobiana de 34 extractos vegetales contra bacilos gramnegativos. Salud Soc Uptc. 2014 [citado 10 jun 2015];1(2). Disponible en: http://revistas.uptc.edu.co/revistas/index.php/salud_sociedad/article/view/3257
Vega-Menchaca MC, Verde-Star J, Oranday-Cárdenas A, Morales-Rubio ME, Núñez-González MA, Rivera-Guillén MA, et al. Actividad antibacteriana y citotóxica de Leucophyllum frutescens (Berl) IM Johnst del Norte de México contra Staphylococcus aureus de aislados clínicos. Rev Mex Cienc Farm. 2013 [citado 15 jun 2015];44(2). Disponible en: http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1870- 01952013000200004&lng=es
Vera Marín B, Sánchez Saénz M. Registro de algunas plantas medicinales cultivadas en San Cristóbal, municipio de Medellín (Antioquia-Colombia). Rev. Fac. Nal. Agr. 2015;68(2):7647-58.
Barrios Paternina E, Mercado Gómez J. Plantas útiles del corregimiento Santa Inés y la vereda San Felipe (San Marcos, Sucre, Colombia). CIENCIA EN DESARROLLO. 2015 [citado 10 may 2015];5(2). Disponible en: http://revistas. uptc.edu.co/revistas/index.php/cienciaendesarrollo/article/view/3668
Zhi-Gang Q. Cellulase-assisted extraction of polysaccharides from Cucurbita moschata and their antibacterial activity. Carbohydr Polym. 2014;101(30):432-4.
Marie-Magdeleine C, Hoste H, Mahieu M, Varo H, Archimede H. In vitro effects of Cucurbita moschata seed extracts on Haemonchus contortus. Vet parasitol. 2009;16(1):99-105.
Rodríguez Diego JG, Arece J, Olivares JL, Alemán Y, Sánchez Castilleja Y. Antihelmínticos, resistencia y método FAMACHA: Experiencia cubana en ovinos. Rev Salud Anim. 2015 [citado 12 jun 2015];37(1). Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0253- 570X2015000100009&lng=es
Ramírez A, Luz S, Díaz B, Hilda E. Actividad antibacteriana de extractos y fracciones del ruibarbo (Rumex conglomeratus). Scientia et Technica. 2007 [citado 12 jun 2015];1(33). Disponible en: http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=84933113
Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. Twenty-second informational supplement. M100-S22. Wayne PA: Clinical and Laboratory Standards Institute. 2012.
Zampini IC, Cudmani N, Isla MI. Actividad antimicrobiana de plantas medicinales argentinas sobre bacterias antibiótico-resistentes. Acta Bioquím. Clín Latinoam. 2007 [citado 12 jun 2015];41(3). Disponible en: http://www.scielo.org.ar/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0325- 29572007000300013&lng=es
Padrón Márquez B. Componentes químicos con actividad bactericida, fungicida y citotóxica de plantas de la familia Myrtaceae y Lauraceae. [Tesis doctoral]. Facultad de Ciencias Biológicas; Universidad Autónoma de Nuevo León, México. 2010.
Ramírez-Rueda RY, Mojica DN. Actividad antibacteriana de extractos de Gnaphalium polycephalum Michx contra Staphylococcus aureus, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa. Revista Investig. Salud Univ. Boyacá. 2014;1(1):63-71.
Henao J, Muñoz LJ, Ríos E, Padilla L, Giraldo GA. Evaluación de la actividad antimicrobiana de los extractos de la planta Lippia origanoides HBK cultivada en el Departamento del Quindío. Rev Invest Univ Quindio. 2009;(19):159-64.
Machado TB, Pinto AV, Pinto M.C.F.R, Leal I.C.R, Silva MG, Amaral A.C.F. In vitro activity of Brazilian medicinal plants, naturally occurring naphthoquinones and their analogues, against methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Int J Antimicrob Agents. 2003;21(3):279-84.
Bermejo V, Spadaccini L, Elbert GR, Duarte AIE, Erbin M, Cahn P. Prevalencia de Staphylococcus aureus resistente a meticilina en infecciones de piel y partes blandas en pacientes ambulatorios. Medicina (B. Aires). 2012 [citado 20 jul 2015];72(4). Disponible en: http://www.scielo.org.ar/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0025- 76802012000400002&lng=es
Sabrià M, Pedro-Botet ML. Bacteriemia por Staphylococcus aureus. Mortalidad y resistencia asociada a la meticilina. Med Clin (Barc). 2007;128(18):697-8.
Castillo JS, Leal AL, Álvarez CA, Cortés JA, Henríquez E, Buitrago G et al. Bacteriemia por Staphylococcus aureus resistente a la meticilina en la unidad de cuidados intensivos: revisión de los estudios de pronóstico. Infectio. 2011; 15(1):25-32.
Hernandez-Gomez C, Blanco VM, Motoa G, Correa A, Maya JJ, Cadena E, et al. Evolución de la resistencia antimicrobiana de bacilos Gram negativos en unidades de cuidados intensivos en Colombia. Biomedica. 2013 [citado 20 jul 2015];34(1). Disponible en: http://www.scielo.org.co/pdf/bio/v34s1/v34s1a11.pdf
García-Hernández AM, García-Vázquez E, Hernández-Torres A, Ruiz J, Yagüe G, Herrero JA, et al. Bacteriemias por Escherichia coli productor de betalactamasas de espectro extendido (BLEE): significación clínica y perspectivas actuales. Rev Esp Quimioter. 2011;24(2):57-66.
Thomson JM, Bonomo RA. The threat of antibiotic resistance in Gram-negative pathogenic bacteria: β-lactams in peril. Curr Opin Microbiol. 2005;8(5):518-24.
Gaitán CSL, Espinal MPA. Caracterización molecular de Escherichia coli y Klebsiella pneumoniae productores de ß-lactamasas de espectro extendido en hospitales de la Región Caribe, Colombia. Rev Chil Infectol. 2009 [citado 20 ago 2015];26(3). Disponible en: http://www.scielo.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S071610182009000400006 &lng=es
Gonzalez L, Cortes JA. Revisión sistemática de la farmacorresistencia en enterobacterias de aislamientos hospitalarios en Colombia. Biomédica. 2014;34(2):180-97.