medigraphic.com
ISSN 2395-8723 (Digital)
ISSN 1405-888X (Impreso)
TIP Revista Especializada en Ciencias Químico-Biológicas

2018, Número 1

<< Anterior Siguiente >>

TIP Rev Esp Cienc Quim Biol 2018; 21 (1)


El cromo (VI) induce la frecuencia de mutación y pérdida de heterocigocidad en Saccharomyces cerevisiae

Santoyo G

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 26
Paginas: 34-39
Archivo PDF: 432.27 Kb.


RESUMEN

El cromo (Cr) es uno de los principales contaminantes en desechos industriales, asociado con diversos daños a la salud humana, motivo por el que en este trabajo analizamos el efecto del Cr hexavalente sobre la frecuencia de mutación espontánea (utilizando el gen reportero CAN1) y la pérdida de heterocigocidad en la levadura Saccharomyces cerevisiae. Se comparó su efecto en una mutante en el gen rev3, que codifica para la polimerasa zeta. Los resultados sugieren que el Cr(VI) puede inducir la frecuencia de mutación entre 20 y 28 veces, a concentraciones de 25 y 50 mM, respectivamente e incrementarse en una mutante rev3 y aunque no se observaron los mismos niveles como en la cepa silvestre, esto sugiere que, además de rev3, existen otros factores que inducen la aparición de mutaciones en el marcador empleado. El Cr también tuvo un efecto al aumentar la pérdida de heterocigocidad de entre 50 y 57 veces en la cepa silvestre y la mutante rev3, respectivamente. Estos resultados muestran que REV3 participa en el efecto mutagénico causado por el Cr(VI), pero no en la pérdida de heterocigocidad, en las células de la levadura.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Amberg, D.C., Burke, D.J. & Strathern, J.N. (2005). Methods in yeast genetics: a Cold Spring Harbor Laboratory Course Manual. CSHL Press. Cold Spring Harbor, NY.

  2. Aylon, Y. & Kupiec, M. (2004). DSB repair: the yeast paradigm. DNA Repair., 3,797-815. DOI: 10.1016/j.dnarep.2004.04.013

  3. Cervantes, C., Campos-García, J., Devars, S., Gutiérrez-Corona, F., Loza-Tavera, H., Torres-Guzmán, J.C. & Moreno-Sánchez, R. (2001). Interactions of chromium with microorganisms and plants. FEMS Microbiol. Rev., 25,335-347. DOI: 10.1111/j.1574- 6976.2001.tb00581.x

  4. Donahue, S.L., Lin, Q., Cao, S., & Ruley, H. E. (2006). Carcinogens induce genome-wide loss of heterozygosity in normal stem cells without persistent chromosomal instability. P.N.A.S., 103,11642- 11646. DOI: 10.1159/000100406

  5. Dudasova, Z., Dudas, A. & Chovanec, M. (2004). Non-homologous endjoining recombination factors of Saccharomyces cerevisiae. FEMS Microbiol. Rev., 28,581-601 DOI: 10.1016/j.femsre.2004.06.001

  6. Harris, G.K. & Shi, X. (2003). Signaling by carcinogenic metals and metal-induced reactive oxygen species. Mutat. Res., 533,183-200. DOI: 10.1016/j.mrfmmm.2003.08.025

  7. Holbeck, S.L. & Strathern, J.N. (1997). A role for REV3 in mutagenesis during double-strand break repair in Saccharomyces cerevisiae. Genetics., 147,1017-1024. DOI: http://www.genetics.org/content/ genetics/147/3/1017.full.pdf

  8. Holland, S., Lodwig, E., Sideri, T., Reader, T., Clarke, I., Gkargkas, K., Hoyle, D.C., Delneri, D., Oliver S.G., & Avery, S.V. (2007). Application of the comprehensive set of heterozygous yeast deletion mutants to elucidate the molecular basis of cellular chromium toxicity. Genome Biol., 8, R268. DOI: 10.1186/gb- 2007-8-12-r268

  9. Kirpnick-Sobol, Z., Reliene, R., & Schiestl, R.H. (2006). Carcinogenic Cr (VI) and the nutritional supplement Cr (III) induce DNA deletions in yeast and mice. Cancer Res., 66, 3480-3484. DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-05-3944

  10. Krogh, B.O. & Symington, L. (2004). Recombination proteins in yeast. Annu. Rev. Genet., 38, 233-271. DOI: 10.1146/annurev. genet.38.072902.091500

  11. Muzumdar, M.D., Dorans, K.J., Chung, K.M., Robbins, R., Tammela, T., Gocheva, V. & Jacks, T. (2016). Clonal dynamics following p53 loss of heterozygosity in Kras-driven cancers. Nature Commun., 7,12685. DOI: 10.1038/ncomms12685

  12. Nelson, J. R., Lawrence, C. W., & Hinkle, D. C. (1996). Thymine-thymine dimer bypass by yeast DNA polymerase zeta. Science, 272,1646. DOI: 10.1126/science.272.5268.1646

  13. Nestor, A.L., Hollopeter, S.L., Matsui, S.I., & Allison, D. (2007). A model for genetic complementation controlling the chromosomal abnormalities and loss of heterozygosity formation in cancer. Cytogenet. Genome Res., 116, 235-247. https://doi. org/10.1159/000100406

  14. O’Brien, T.J., Ceryak, S. & Patierno, S.R. (2002). Complexities of chromium carcinogenesis: Role of cellular response, repair and recovery mechanisms. Mutat. Res., 533, 3-36. DOI: 10.1016/j. mrfmmm.2003.09.006

  15. O’Brien, T.J., Fornsaglio, J.L., Ceryak, S. & Patierno, S.R. (2003). Effects of hexavalent chromium on the survival and cell cycle distribution of DNA repair-deficient S. cerevisiae. DNA Repair., 1, 617-627. DOI: 10.1016/S1568-7864(02)00078-2

  16. Rajpal, D. K., Wu, X., & Wang, Z. (2000). Alteration of ultravioletinduced mutagenesis in yeast through molecular modulation of the REV3 and REV7 gene expression. Mutat. Res., 461,133-143. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/S0921-8777(00)00047-1

  17. Rattray, A., Santoyo, G., Shafer, B. & Strathern, J.N. (2015). Elevated mutation rate during meiosis in Saccharomyces cerevisiae. PLoS Genet., 11,e1004910. DOI: http://dx.doi.org/10.1371/journal. pgen.1004910

  18. Rattray, A.J., & Strathern, J.N. (2003). Error-Prone DNA Polymerases: When making a mistake is the only way to get ahead 1. Annu. Rev. Genet., 37,31-66. DOI: 10.1146/annurev. genet.37.042203.132748

  19. Rattray, A.J., McGill, C.B., Shafer, B.K. & Strathern, J.N. (2001). Fidelity of mitotic double-strand-break repair in Saccharomyces cerevisiae: a role for SAE2/COM1. Genetics., 158,109-22. DOI: http://www.genetics.org/content/genetics/158/1/109.full.pdf

  20. Rattray, A.J., Shafer, B.K., McGill, C.B. & Strathern, J.N. (2002). The roles of REV3 and RAD57 in double-strand-break-repair-induced mutagenesis of Saccharomyces cerevisiae. Genetics., 162,1063- 1077. DOI: http://www.genetics.org/content/genetics/162/3/1063. full.pdf

  21. Rothkamm, K., Krüger, I., Thompson, L.H. & Löbrich, M. (2003). Pathways of DNA double-strand break repair during the mammalian cell cycle. Mol. Cell. Biol., 23,5706-5715. DOI: 10.1128/MCB.23.16.5706-5715.2003

  22. Santoyo, G. & Strathern, J. N. (2008). Non-homologous end joining is important for repair of Cr (VI)-induced DNA damage in Saccharomyces cerevisiae. Microbiol. Res., 163,113-119. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.micres.2007.09.001

  23. Santoyo, G., & Romero, D. (2005). Gene conversion and concerted evolution in bacterial genomes. FEMS Microbiol. Rev., 29,169- 183. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fmrre.2004.10.004

  24. Singhal, R. K., Hinkle, D. C., & Lawrence, C. W. (1992). The REV3 gene of Saccharomyces cerevisiae is transcriptionally regulated more like a repair gene than one encoding a DNA polymerase. Mol. Gen. Gen., 236,17-24. DOI: 10.1007/BF00279638

  25. Sonoda, E., Okada, T., Zhao, G. Y., Tateishi, S., Araki, K., Yamaizumi, M., Yagi, T., Verkaik, N. S., van Gent, D. C., Takata, M., & Takeda, S. (2003). Multiple roles of Rev3, the catalytic subunit of polzeta in maintaining genome stability in vertebrates. EMBO J., 22, 3188–3197. DOI 10.1093/emboj/cdg308

  26. Xie, H., Wise, S.S., Holmes, A.L., Xu, B., Wakeman, T.P., Pelsue, S.C., Singh, N.P. & Wise, J.P. (2005). Carcinogenic lead chromate induces DNA double-strand breaks in human lung cells. Mutat. Res., 586,160-172. DOI: 10.1016/j.mrgentox.2005.06.002




2020     |     www.medigraphic.com