2017, Número 3
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Rev Biomed 2017; 28 (3)
¿Son los roedores sinantrópicos una amenaza para la salud pública de Yucatán?
Torres-Castro MA
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 42
Paginas: 179-186
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RESUMEN
Los roedores sinantrópicos participan en el
ciclo infeccioso de numerosas enfermedades
zoonóticas de importancia a nivel mundial y
nacional, ya sea como reservorios, hospederos
intermediarios u hospederos de los ectoparásitos
vectores que transmiten a los agentes etiológicos.
En Yucatán, México, las especies más frecuentes
son
Rattus rattus y
Mus musculus, los cuales han
sido identificados en medios rurales, sub-urbanos
y urbanos. En los últimos años en Yucatán, se
han realizado distintos estudios epidemiológicos
en los que se han descrito a estos roedores como
positivos a diversos agentes zoonóticos de
relevancia en salud pública y animal. El objetivo
de la presente revisión es mencionar los agentes
infecciosos reportados en estas investigaciones,
para manifestar la importancia de los roedores
sinantrópicos en la diseminación y/o control de
algunas enfermedades endémicas en la región.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Huchon D, Madsen O, Sibbald MJJB, Ament K, Stanhope MJ, Catzeflis F, et al. Rodent phylogeny and a timescale for the evolution of Glires: evidence from an extensive taxon sampling using three nuclear genes. Mol Biol Evol. 2002 Jul; 19(7): 1053-1065.
Kay EH & Hoekstra HE. Rodents. Curr Biol. 2008 May; 18(10): R406-410. doi: 10.1016/j. cub.2008.03.019.
Mac Donald D. The new encyclopedia of mammals, 2nd edition: Oxford (UK): Andromeda; 2011.
Abramova L. 2010. Main regularities in synanthropization of different vegetation types in the Republic of Bashkortostan. Russ J Ecol. 2010 May; 41(3): 206-10. doi:10.1134/S1067413610030021.
Firth C, Bhat M, Firth M, Williams A, Frye M, Simmonds P, et al. Detection of zoonotic pathogens and characterization of novel viruses carried by commensal Rattus norvegicus in New York City. MBio. 2014 Oct; 5(5): e01933-14. doi:10.1128/ mBio.01933-14.
Meerburg BG, Singleton GR, Kijlstra A. Rodentborne diseases and their risks for public health. Crit Rev Microbiol. 2009 Apr; 35(3): 221-70. doi: 10.1080/10408410902989837.
Panti-May JA, Hernández-Betancourt SF, Torres- Castro MA, Machain-Williams C, Cigarroa-Toledo N, Sodá L, et al. Population characteristics of humancommensal rodents present in households from Mérida, Yucatán, México. Manter J Parasit Biodivers. 2016 Sept; Paper 5. doi:10.13014/K2VD6WCX.
Panti-May JA, Hernández-Betancourt S, Ruiz-Piña H, Medina-Peralta S. Abundance and population parameters of commensal rodents present in rural households in Yucatan, Mexico. Int Biodeterior Biodegradation. 2012 Jan; 66(1): 77-81. doi: doi. org/10.1016/j.ibiod.2011.10.006.
Clapperton BK. A review of the current knowledge of rodent behavior in relation to control devices. Sci Conserv. 2006; 263: 1–55. ESTE ES UN LIBRO NO ARTÍCULO
Almeida A, Corrigan R, Sarno R. The economic impact of commensal rodents on small businesses in Manhattan’s Chinatown: trends and possible causes. Sub Sust. 2013; 1(1). Article 2. doi: 10.5038/2164- 0866.1.1.2.
Torres-Castro M, Hernández-Betancourt S, Agudelo-Flórez P, Arroyave-Sierra E, Zavala- Castro J, Fernando I. Puerto. Revisión actual de la epidemiología de la leptospirosis. Rev Med Inst Mex Seguro Soc. 2016 Sept-Oct; 54(5): 620-625.
Torres-Castro MA, Gutiérrez-Ruiz E, Hernández- Betancourt S, Peláez-Sánchez R, Agudelo-Flórez P, Guillermo-Cordero L, et al. First molecular evidence of Leptospira spp. in synanthropic rodents captured in Yucatan, Mexico. Revue Méd Vét. 2014; 165(7- 8): 213-218. http://www.revmedvet.com/2014/ RMV165_213_218.pdf
Torres-Castro M, Guillermo-Cordero L, Hernández- Betancourt S, Gutiérrez-Ruiz E, Agudelo-Flórez P, Peláez-Sánchez R, et al. First histopathological study in kidneys of rodents naturally infected with Leptospira pathogenic species from Yucatan, Mexico. Asian Pac J Trop Med. 2016 Feb; 9(2): 145-147. doi: 10.1016/j.apjtm.2016.01.018.
Vado-Solís I, Cárdenas-Marrufo MF, Jiménez- Delgadillo B, Alzina-López A, Laviada-Molina H, Suarez-Solís V, et al. Clinical-epidemiological study of leptospirosis in humans and reservoirs in Yucatán, México. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 2002 Nov- Dec; 44(6): 335-340.
Yusti D, Arboleda M, Agudelo-Flórez P. Factores de riesgo sociales y ambientales relacionados con casos de leptospirosis de manejo ambulatorio y hospitalario, Turbo, Colom. Biomed. 2013; 33(Supl.1): 117-129. doi: doi.org/10.7705/biomedica.v33i0.1457.
Solís-Hernández A, Rodríguez-Vivas I, Esteve- Gassent MD, Villegas-Pérez SL. Prevalencia de Borrelia burgdorferi sensu lato en roedores sinantrópicos de dos comunidades rurales de Yucatán, México. Biomedica. 2016 Mar; 36(Supl.1): 109-17. doi: 10.7705/biomedicav36i3.3139.
Renvoisé A & Raoult D. An update on rickettsiosis. Med Mal Infect. 2009 Feb; 39(2): 71-81. doi: 10.1016/j.medmal.2008.11.003.
Zavala-Castro JE, Zavala-Velázquez JE, Sulú-Uicab JE. Muryne typhus in child, Yucatan, Mexico. Emerg Infect Dis. 2009 Jun; 15(6): 972-974. doi: 10.3201/ eid1506.081367.
Zavala-Castro JE. Rickettsia felis: un patógeno emergente en Latinoamérica. Acta Med Costarric. 2013 (Supl. 1): 11-12. http://www.scielo.sa.cr/pdf/ amc/v55s1/art04.pdf
Panti-May JA, Torres-Castro M, Hernández- Betancourt S, Dzul-Rosado K, Zavala-Castro J, López-Ávila K, et al. Detection of Rickettsia felis in wild mammals from three municipalities in Yucatan, Mexico. Ecohealth. 2015 Sep; 12(3): 523-527. doi: 10.1007/s10393-014-1003-2.
Peniche-Lara G, Dzul-Rosado K, Pérez-Osorio C, Zavala-Castro J. Rickettsia typhi and R. felis in Yucatán as a possible causal agent of undefined febrile cases. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 2015 Mar-Apr; 57(2): 129-132. doi: 10.1590/S0036- 46652015000200005.
Ortiz-Martínez D. Frecuencia de infección de Rickettsia typhi en perros, roedores, y garrapatas de la localidad de Bolmay, Yucatán, México. Tesis para obtener el grado de Doctor en Ciencias Agropecuarias. Campus de Ciencias Biológicas y Agropecuarias. Mérida, México. 2016.
Blanco JR & Raoult D. Enfermedades producidas por Bartonella spp. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2005; 23(5): 313-320. doi: 10.1157/13074971.
Schulte-Fischedick FB, Stuckey MJ, Aguilar-Setién A, Moreno-Sandoval H, Galvez-Romero G, Salas- Rojas M, et al. Identification of Bartonella species isolated from rodents from Yucatan, Mexico, and isolation of Bartonella vinsonii subsp. yucatanensis subsp. nov. Vector Borne Zoonotic Dis. 2016 Oct; 16(10): 636-642. doi: 10.1089/vbz.2016.1981.
Hernández-Cortazar I, Acosta-Viana KY, Ortega- Pacheco A, Guzmán-Marín E del S, Aguilar-Caballero AJ, Jiménez-Coello M. Toxoplasmosis in Mexico: epidemiological situation in humans and animals. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 2015 Mar-Apr; 57(2): 93-103. doi: 10.1590/S0036-46652015000200001.
Torres-Castro MA, Medina-Espinosa DN, Panti- May JA, Hernández-Betancourt SF, Noh-Pech HR, Yeh-Gorocica AB, et al. First molecular evidence of Toxoplasma gondii in synanthropic rodents (Mus musculus and Rattus rattus) captured in Yucatan, Mexico. Revue Méd Vét. 2016 Oct; 167(9-10): 250-255.
Reyes-Novelo E, Ruiz-Piña H, Escobedo- Ortegón J, Rodríguez-Vivas I, Bolio-González M, Polanco-Rodríguez Á, et al. Situación actual y perspectivas para el estudio de las enfermedades zoonóticas emergentes, reemergentes y olvidadas en la Península de Yucatán, México. Tropic Subtrop Agroecosyst. 2011; 14: 35-54. http://www.redalyc. org/pdf/939/93915703003.pdf
Zavala-Velázquez J, Barrera-Pérez M, Rodríguez- Félix ME, Guzmán-Marín E, Ruiz-Piña H. Infection by Trypanosoma cruzi in mammals in Yucatan, Mexico: a serological and parasitological study. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 1996 Jul-Aug; 38(4): 289-292.
Ruíz-Piña H & Van-Wynsberghe NR Infección natural con Trypanosoma cruzi en roedores silvestres de la Península de Yucatán. En: Libro de Memorias del VI Congreso Nacional de Mastozoología. Sociedad Mexicana de Mastozología. Oaxaca, Oaxaca, México. https://www.researchgate.net/ publication/314763019_Memorias_del_XII_ Congreso_Nacional_de_Zoologia_2016
Torres-Castro M, Hernández-Betancourt S, Torres- León M, Puerto FI. Lesiones histológicas asociadas a la posible infección por Trypanosoma cruzi (Chagas, 1990) en corazones de roedores sinantrópicos capturados en Yucatán, México. Anal Biol. 2016 abr; 38: 29-35. doi: org/10.6018/analesbio.38.03.
Ucán-Euán F. Lesiones histopatológicas observadas en corazones de Mus musculus y Rattus rattus positivos a Trypanosoma cruzi por PCR, capturados en dos colonias del sur de la ciudad de Mérida, Yucatán, México. Tesis para obtener el grado de Licenciado en Biología. Campus de Ciencias Biológicas y Agropecuarias. Mérida, México. 2015.
Sulú-Meza JR. Caracterización de las poblaciones de pequeños roedores y su relación con la presencia de Trypanosoma cruzi. Tesis para obtener el grado de Licenciado en Biología. Campus de Ciencias Biológicas y Agropecuarias. Mérida, México. 2014.
Sodá-Tamayo LA. Características poblacionales de Rattus rattus y Mus musculus, y su infección con Trypanosoma cruzi en una localidad urbana de Mérida, Yucatán, México. Tesis para obtener el grado de Licenciado en Biología. Campus de Ciencias Biológicas y Agropecuarias. Mérida, México. 2016.
Herera-Meza MC. Infección por Trypanosoma cruzi en pequeños roedores de una comunidad rural en Yucatán, México. Tesis para obtener el grado de Licenciado en Biología. Campus de Ciencias Biológicas y Agropecuarias. Mérida, México. 2013.
Panti-May JA. Pequeños roedores como huéspedes de Trypanosoma cruzi en viviendas de la localidad de Molas, Yucatán, México. Tesis para obtener el grado de Médico Veterinario Zootecnista. Campus de Ciencias Biológicas y Agropecuarias. Mérida, México. 2011.
Rodríguez-Vivas RI, Panti-May JA, Parada-López J, Hernández-Betancourt SF, Ruiz-Piña HA. The ocurrence of the larval cestode Cysticercus fasciolaris in rodent populations from the Cuxtal ecological reserve, Yucatan, Mexico. J Helminthol. 2011 Dec; 85(4): 458-461. doi: 10.1017/S0022149X10000817.
Panti-May JA, Hernández-Betancourt SF, Rodríguez-Vivas RI, Robles MR. Infection levels of intestinal helminths in two commensal rodent species from rural households in Yucatan, Mexico. J Helminthol. 2013 Jan; 89(1): 42-48. doi: 10.1017/ S0022149X13000576.
Hancke D, Navone GT, Suarez OV. Endoparasite community of Rattus norvegicus captured in a shantytown of Buenos Aires City, Argentina. Helminthologia. 2011; 48: 167. doi:10.2478/s11687- 011-0025-3.
Machain-Williams CI. Isolations and characterization of arthropod-borne viruses rodents in Merida city, Mexico. ISID NEWS. 2015 March. Final Report: http://isid.org/publications/isid_news/ ISIDnewsletter201503.pdf
Cigarroa-Toledo N, Talavera-Aguilar LG, Baak- Baak CM, García-Rejón JE, Hernández-Betancourt S, Blitvich BJ, et al. Serologic Evidence of Flavivirus infections in peridomestic rodents in Merida, Mexico. J Wildl Dis. 2016 Jan; 52(1): 168-172. doi: 10.7589/2015-05-116.
Torres-Castro M, Poot-Pérez M, Moguel-Lehmer C, Reyes-Hernández B, Panti-May A, Noh-Pech H, et al. Detección molecular de Flavivirus en sueros sanguíneos capturados en Yucatán, México. Rev Inv Vet Perú. En prensa.
Yan-Jang SH, Higgs S, McElroy-Horne K, Vanlandingham DL. Flavivirus-mosquito interactions. Viruses. 2014 Nov; 6(11): 4703-4730. doi: 10.3390/v6114703.