2017, Número 1
Siguiente >>
Vet Mex 2017; 4 (1)
Evaluación de la presencia de receptores celulares al virus de Influenza Aviar en oviductos de aves sujetas a muda forzada usando inmunofluorescencia
Castillo-Villanueva E, Sánchez-Godoy F, Escorcia M
Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 17
Paginas: 1-9
Archivo PDF: 1408.14 Kb.
RESUMEN
Durante el 2012, un brote de Influenza Aviar de Alta Patogenicidad ocasionado
por el subtipo H7N3, en México, infectó y ocasionó la muerte o
el sacrificio de alrededor de 22 millones de aves ponedoras. Durante este
periodo, el principal desafío de los avicultores fue asegurar el flujo de comercialización
del huevo. Además de los protocolos sanitarios y de vacunación,
se implementaron manejos de muda forzada en la zona afectada.
Este manejo aseguró el mantenimiento de la producción de huevo en zonas
cuarentenadas, pues disminuyó la mortalidad de las parvadas infectadas y
reestimuló el retorno a la producción normal de huevo. Para entender cómo
la muda forzada redujo la mortalidad de las aves infectadas, examinamos la
distribución del receptor del virus de Influenza Aviar en el oviducto de gallinas
sujetas a muda forzada. Evaluamos si los cambios en el tracto reproductivo
causado por la muda forzada disminuyen la expresión del receptor específico
en la membrana celular. La presencia de receptores específicos determina
la susceptibilidad del hospedador al virus de Influenza. Utilizamos la técnica
de inmunofluorescencia con la lectina
Maackia amurensis para identificar
la presencia del receptor viral en cortes histológicos de oviductos de aves
en producción y en oviductos de aves con muda forzada. Los resultados
mostraron la presencia y distribución de los receptores a Influenza Aviar.
Observamos una fuerte señal de los receptores en los cortes histológicos de
los oviductos de aves en producción. Por el contrario, la señal fue baja en los
oviductos de aves sometidas a muda. Estos resultados demuestran una disminución
en el número de receptores de aves sometidas a muda forzada. La
falta de receptores afecta la infección y la replicación del virus, así como los
daños inducidos por el virus en el oviducto, lo que podría ayudar a explicar
la observación en el campo de que las aves infectadas con Influenza Aviar y
sometidas a muda forzada sobreviven más que las aves a las que no se les
somete a muda.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Organización Mundial de la Salud Anima [OIE]. Update on avian influenza Paris, France: OIE; 2012 [Available from: www.oie.int/en/animal-health-in-the-world/ update-on-avian-influenza/2012/.
Diario Oficial de la Federación. Acuerdo Sanitario para la Erradicación de Influenza Aviar de Alta Patogenicidad H7N3. In: SAGARPA, editor. México D F: Secretaría de Gobernación; 2013.
Organización Mundial de la Salud Animal [OIE]. Update on avian influenza Paris, France: OIE; 2013 [Available from: http://www.oie.int/es/ sanidad-animal-en-el-mundo/actualizacion-sobre-la-influenza-aviar/2013/.
Kapczynski DR, Patin-Jackwood M, Guzman SG, Ricardez Y, Spackmen E, Bertran K, et al. Characterization of the 2012 highly pathogenic avian influenza H7N3 virus isolated from poultry in an outbreak in Mexico: Pathobiology and vaccine protection. J Virol. 2013;87(16):9086-96. doi: 10.1128/JVI.00666-13.
Fouchier RA, Kawaoka Y, Cardona C, Compans RW, García-Sastre A, Govorkova EA, et al. Gain-of-function experiments on H7N9. Science. 2013;341(6146):612-3. doi: 10.1126/science.341.6146.612.
Skehel JJ, Wiley DC. Receptor binding and membrane fusion in virus entry: The influenza hemagglutinin. Annu Rev Biochem. 2000;69:531-69. doi: 10.1146/ annurev.biochem.69.1.531.
Sassaki GL, Elli S, Rudd TR, Macchi E, Yates EA, Naggi A, et al. Human (α2,6) and avian (α2,3) sialylated receptors of Influenza A virus show distinct conformations and dynamics in solution. Biochemistry. 2013;52:7217-30. doi: 10.1021/bi400677n.
INEGI. Índice Nacional de Precios al Consumidor. In: Geografía INdEy, editor. México D. F.2016.
Sariözkan S, Güclü BK, Kara K, Gürcan S. Comparison of different molting methods and evaluation of the effects of postmolt diets supplemented with humate and carnitine on performance, egg quality, and profitability of laying hens. J App Poult Res. 2013;22(4):689-99. doi: 10.3382/japr.2012-00612.
Bell DD. Historical and current molting practices in the U.S. table egg industry. Poult Sci. 2003;82:965–70.
Organización Mundial de la Salud Animal [OIE]. Update on avian influenza Paris, France: OIE; 2016 [Available from: www.oie.int/en/animal-health-in-the-world/ update-on-avian-influenza/2016/.
Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Norma Oficial Mexicana. Especificaciones técnicas para la producción, cuidado y uso de los animales de laboratorio. México D F: Universidad Nacional Autónoma de México; 2014.
Prophet EB, Mills B, Arrington JB, Sobin LH. Laboratory Methods in Histotechnology (Armed Forces Institute of Pathology). Washington D C, USA: American Registry of Pathology; 1992. 279 p.
França M, Stallknecht DE, Howerth EW. Expression and distribution of sialic acid influenza virus receptors in wild birds. Avian Pathol. 2013;42(1):60-71. doi: 10.1080/03079457.2012.759176.
Eroschenko VP, Wilson WO. Histological changes in the regressing reproductive organs of sexually mature male and female Japanese quail. Biol Reprod. 1974;11:168-79.
Wang JY, Chen ZL, Li CS, Cao X, Wang R, Tang C, et al. The distribution of sialic acid receptors of avian influenza virus in the reproductive tract of laying hens. Molecular and Cellular Probes. 2015;29:129-34. doi: 10.1016/j. mcp.2015.01.002.
García A, Johnson H, Srivastava DK, Jayawardene DA, Wehr DR, Webster RG. Efficacy of inactivated H5N2 influenza vaccines against lethal A/Chicken/Queretaro/ 19/95 infection. Avian Dis. 1998;42(2):248-56.