2016, Número 4
Siguiente >>
Biotecnol Apl 2016; 33 (4)
Propagación in vitro de banano variedad Orito (Musa acuminata AA)
Cruz-Rosero N, Canchignia-Martínez H, Morante-Carriel J, Nieto-Rodríguez E, Cruz-Rosero E, Cabrera-Casanova D
Idioma: Ingles.
Referencias bibliográficas: 24
Paginas: 4201-4204
Archivo PDF: 618.93 Kb.
RESUMEN
Los métodos de propagación tradicional de banano no satisfacen la demanda del cultivo ni garantizan la obtención de plantas libres de enfermedades o altos rendimientos al ser propagados por la vía tradicional, producto del ataque de enfermedades. La micropropagación
in vitro es la herramienta que permite obtener plantas con excelentes características: sanidad, alto vigor y rendimiento de frutos. Por ello, en esta investigación se estableció un protocolo para la propagación
in vitro de banano variedad Orito (
M. acuminata AA), con cuatro fases (establecimiento, multiplicación, enraizamiento y aclimatización). Se partió de cormos, a los que se les realizaron los respectivos rebajes antes de llevarlos al laboratorio. En la primera fase de establecimiento aséptico de yemas se controló eficientemente la contaminación por microorganismos en el tratamiento T2 (
Tween 80 0.1 % con cloro 20 % y HgCl
2 0.2 % durante 5 min), obteniendo explantes completamente libres de contaminación y con un 100 % de supervivencia. Los explantes sanos y asépticos fueron transferidos a la fase de multiplicación, y mostraron efectos similares en el número de brotes (1.31) para todas las concentraciones estudiadas. La variable longitud de brote fue de 8.57 cm para el T1 (menor concentración de BAP 2 mg/L más AIA 0.43 mg/L). Los brotes obtenidos fueron sucesivamente transferidos a un medio de refrescamiento
in vitro y al invernadero para su enraizamiento y aclimatación
ex vitro en arena. En esta última fase se obtuvo un 100 % de supervivencia, 7 raíces por planta y una altura promedio de 11.40 cm, y las plantas obtenidas fueron vigorosas, sanas y asépticas.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
INIAP. Guía para el manejo orgánico del banano Orito. Experiencias compiladas a partir de agricultores y técnicos. Quito: INIAP; 2004.
MAGAP. Serie histórica 2000-2012. 2015 [cited 2016 Aug 11]. Available from: http://sinagap.agricultura.gob.ec/banano
El banano orito despunta en los mercados. El Agro. 2014. 2014 Mar 31 [cited 2016 Aug 11]. Available from: http://www.revistaelagro.com/2014/03/31/el-banano-orito-despunta-en-los-mercados
PROECUADOR. Exportación de guineo “creció” un 63%. 2012 Apr 14 [cited 2016 Aug 11]. Available from: http://www.pro-ecuador.gob.ec/2012/04/04/exportacion-de-guineo-orito-crecio-un-63
Aular J, Cáceres M. Consideraciones sobre la producción de frutas en Venezuela. Rev Brasileira Fruticult. 2011;3(1):187-198.
Murashige T, Skoog F. A revised medium for rapid growth and biossays of tobacco cultures. Physiol Plant. 1962;15:473-97.
Delgado M, Cuba M, Hechenleitner P, Thiers O. Propagación vegetativa de taique (Desfontainia spinosá) y tepa (Laureliopsis philippianá) con fines ornamentales. Bosque (Valdivia). 2008;29(2):120-6.
Medina M, Medina C, Medina L. Propagación in vitro de Musa acuminata (Simmunds) plátano bocadillo del Chocó, Colombia, a partir del cultivo de meristemos apicales. Rev Biodiversidad Neotropical. 2015;5(1):47-53.
Rios G, Añez N, Ramírez M, Bracho B, Araujo D, Suárez H, et al. Cultivo in vitro de yemas, tratadas con benciladenina, provenientes de cormos enteros o seccionados de plátano “Cambur Manzano”. Bioagro, 2013;25(2):137-42.
Uzcátegui J, Osorio D, Rivas M. Evaluación del comportamiento in vitro de ápices de plátano Musa AAB cv. “Hartón” y “Hartón Doble Tallo”. Producción Agropecuaria. 2010;3(1):7-12.
Hoyos J, Perea R, Velasco R. Evaluación del efecto de diferentes concentraciones de fitohormonas en la micropropagación del plátano dominico Hartón (Musa AAB Simmonds). Biotecnología en el Sector Agropecuario y Agroindustrial. 2008;6(2):7-18.
Ramírez-Villalobos M, De García E, Lindorf H. Cambios morfoanatómicos en los ápices del vástago y de la raíz del banano Williams (AAA, Musa spp.) bajo distintas concentraciones de N6-benciladenina1,2. J Agric Univ Puerto Rico. 2008; 92(1-2):53-72.
Canchignia F, Sigcha L, Toaquiza J, Ramos L, Saucedo S, Carranza S, et al. Alternativas para la Propagación in vitro de Plátano Variedad Maqueño (Musa balbisiana AAB). Ciencia y Tecnología. 2008;(1):43-8.
Sepúlveda N, Murillo M, Medina M. Propagación in vitro de musáceas del Chocó a partir de meristemos radiculares. Investigación, Biodiversidad y Desarrollo. 2008;27(1):96-9.
Villegas Z, Giménez C, Vílchez J, Moreno M, Sandoval L, Colmenares M. Oxidación en la inducción de la embriogénesis somática a partir de flores masculinas inmaduras de Gran Enano (Musa AAA). Revista de la Facultad de Agronomía. 2008;25(3):570-88.
Albarran J, González A, González O, Salazar E, Trujillo I, Fuchs M, et al. Embriogénesis somática a partir de flores masculinas de pineo gigante y cambur manzano. Agron Trop. 2009;59(4):363-71.
Silva A, Trujillo I, Vidal M, Pérez V. Evaluación de la inducción de variabilidad genética en cambur manzano (Musa AAB) a través de marcadores RAPD. Agron Trop. 2009;59(4):413-22.
Colmenares M, Giménez C. Multiplicación in vitro de Musa spp. mediante sistema de inmersión temporal. Revista de la Facultad de Agronomía. 2003;20(4):468-77.
Ramírez-Villalobos M, Lindorf H, García E. Cambios morfoanatómicos del ápice del vástago en banano CIEN BTA-03 y su parental Williams bajo condiciones in vitro. Revista de la Facultad de Agronomía (LUZ). 2011;28(1):62-72.
Arredondo A. Establecimiento de cadenas proliferativas y enraizamiento in vitro de Juglans regia L. a partir de embriones [disertación]. Concepción: Universidad de Concepción; 2000.
Izquierdo H, González M, Núñez M, Proenza R, Álvarez I. Efectos de la aplicación de un análogo espirostánico de brasinoesteroides en vitroplantas de banano (Musa spp.) durante la fase de aclimatización. Cult Trop. 2012;33(1):71-6.
Rodríguez A, Posada-Pérez L, Gómez R, Reyes M, Tejeda, M. Aclimatización de plantas de Carica papaya var. ‘Maradol roja’ obtenidas por embriogénesis somática. Biotecnol Veg. 2009;9(2):91-7.
Monteuuis O. Recent advances in mass clonal propagation of Teak [abstract]. In: BIO-REFOR. Proceedings of the International Workshop BIO-REFOR. Kangar, Malaysia: BIO-REFOR; 1995. p. 1-3.
De Leij F, Dixon-Hardy J, Lynch J. Effect of 2,4-diacetylphloroglucinol-producing and non-producing strains of Pseudomonas fluorescens on root development of pea seedlings in three different soil types and its effect on nodulation by Rhizobium. Biol Fert Soils. 2002;35(2):114-21.