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ISSN 1561-3011 (Digital)

2015, Número 2

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Rev Cubana Invest Bioméd 2015; 34 (2)


Daño a células endoteliales en cultivo inducido por el isoprostano 8-iso-PGF2a

Pereira RN, García PJC

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 30
Paginas: 112-121
Archivo PDF: 195.23 Kb.


RESUMEN

Introducción: el endotelio vascular posee un papel esencial en los procesos asociados a la enfermedad cardiovascular. Existe estrecha relación entre el desbalance redox de estas células y la aparición y evolución de estas enfermedades. Entre los marcadores de daño oxidativo a los lípidos de membranas se encuentra el isoprostano 8-iso-PGF2a, que aumenta en estos pacientes.
Objetivo: evaluar el efecto del isoprostano 8-iso-PGF2a sobre células endoteliales en cultivo y la protección con la proteína de estrés térmico a-cristalina.
Métodos: se cultivaron células endoteliales de la línea H5V y se evaluó el efecto del isoprostano 8-iso-PGF2a y del análogo del tromboxano A2, U46619, sobre la supervivencia celular. Se evaluó el efecto protector de la proteína de estrés térmico acristalina a través de la incubación de los cultivos con 1 mg/ml de la proteína previo a la inducción del daño con los compuestos en estudio.
Resultados: la supervivencia celular disminuyó proporcional al aumento de la concentración del isoprostano y del U46619. La a-cristalina aumentó la supervivencia celular en un 20% al preincubar los cultivos sometidos al efecto de ambos compuestos.
Conclusiones: el isoprostano 8-iso-PGF2a, además, de ser un marcador de daño oxidativo puede ser considerado un inductor directo de daño a las células del endotelio vascular, efecto mediado a través, de la generación de tromboxano A2 o la activación de su receptor. La proteína de estrés térmico a-cristalina, añadida de forma exógena, puede considerarse un protector endotelial.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Mudau M, Genis A, Lochner A, Trijdom HS. Endothelial dysfunction: the early predictor of atherosclerosis. Cardiovasc J Afr. 2012;23:222-31.

  2. Thomas SR, Witting PK, Drummond GR. Redox Control of Endothelial Function and Dysfunction: molecular mechanisms and therapeutic opportunities. Antioxid. Redox Signal. 2008;10:1710-65.

  3. Zhang ZJ. Systematic review on the association between F2-isoprostanes and cardiovascular disease. Ann Clin Biochem. 2013;50:108-14.

  4. Niki E. Biomarkers of lipid peroxidation in clinical material. Biochim Biophys Acta . 2014;1840:809-17.

  5. Von Harsdorf R, Li PF, Dietz R. Signaling pathways in reactive oxygen speciesinduced cardiomyocyte apoptosis. Circulation. 1999;99:2934-41.

  6. Kromer BM, Tippins JR. Coronary artery constriction by the isoprostane 8-epi-PG2a. Br J Pharmacol. 1996;119:1276-80.

  7. Hoffman SW, Moore S, Ellis EF. Isoprostanes: free radical-generated prostaglandins with constrictor effects on cerebral arterioles. Stroke. 1997;28:844-9.

  8. Milatovic D, Montine TJ, Aschner M. Measurement of Isoprostanes as Markers of Oxidative Stress. Methods Mol Biol. 2011;758:195-204.

  9. lyasova D, Spasojevic I, Base K. Urinary F2-isoprostanes as a biomarker of reduced risk of type 2 diabetes. Diabetes Care. 2012;35:173-4.

  10. Galano JM, Mas E, Barden A, Mori TA, Signorini C. Isoprostanes and neuroprostanes: total synthesis, biological activity and biomarkers of oxidative stress in humans. Prostaglandins Other Lipid Mediat. 2013;107:95-102.

  11. Benndorf R, Schwedhelm E, Gnann A. Isoprostanes inhibit vascular endothelial growth factor induced endothelial cell migration, tube formation, and cardiac vessel sprouting in vitro, as well as angiogenesis in vivo via activation of the thromboxane A(2) receptor: a potential link between oxidative stress and impaired angiogenesis. Circ Res. 2008;103:1037-46.

  12. Muzaffar S1, Shukla N, Massey Y, Angelini GD, Jeremy JY. NADPH oxidase 1 mediates upregulation of thromboxane A2 synthase in human vascular smooth muscle cells: inhibition with iloprost. Eur J Pharmacol . 2011;658:187-92.

  13. Miao Zhang, Ping Song, Jian Xu, Ming-Hui Zou. Activation of NAD(P)H oxidases by thromboxane A2 receptor uncouples endothelial nitric oxide synthase. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2011;31:125–32.

  14. Hausermann L, St-Louis J. Thromboxane and isoprostane share the same prostanoid receptors to increase human placental tone. Placenta. 2011;32:941-8.

  15. He J, Zhou Y, Xing J, Wang Q, Zhu H, Zhu Y, et al. Liver kinase B1 is required for thromboxane receptor-dependent nuclear factor-κB activation and inflammatory responses. A rterioscler Thromb Vasc Biol. 2013;33:1297-305.

  16. Poredos P, Jezovnik MK. Testing endothelial function and its clinical relevance. J Atheroscler Throm. 2013;20:1-8.

  17. Vita JA. Endothelial Function. Circulation. 2011;124:e906-e912.

  18. Derham BK, Harding JJ. a-Crystallin as a Molecular Chaperone. Prog Ret Eye Res. 1999;18:463-509.

  19. Basha E, O’Neill H, Vierling E. Small heat shock proteins and α-crystallins: dynamic proteins with flexible functions. Trends Biochem Sci. 2012;37:106-17.

  20. Xu Q, Metzler B, Jahangiri M, Mandal K. Molecular chaperones and heat shock proteins in atherosclerosis. Am J Physiol Heart Circ Physiol . 2012;302:H506-14.

  21. Garlanda C, Parravicini C, Sironi M, De Rossi M, Wainstok de Calmanovici R. Progressive growth in immunodeficient mice and host cell recruitment by mouse endothelial cells transformed by polyoma middle-sized T antigen: implications for the pathogenesis of opportunistic vascular tumors. Proc Natl Acad Sci USA. 1994;91:7291-5.

  22. Denizot F, Lang R. Rapid colorimetric assay for cell growth and survival. Modifications to the tetrazolium dye procedure giving improved sensitivity and reliability. J Imm Meth. 1986;89:271-7.

  23. Brault S, Martinez-Bermudez AK, Marrache AM, Gobeil F Jr, Hou X, Beauchamp M, et al. Selective neuromicrovascular endothelial cell death by 8-Iso-prostaglandin F2alpha: possible role in ischemic brain injury. Stroke. 2003;34:776-82.

  24. Basu S. F2-isoprostanes in human health and diseases: from molecular mechanisms to clinical implications. Antioxid Redox Signal. 2008;10:1405–34.

  25. Petri MH,Tellier C, Michiels C, Ellertsen I, Dogné JM, Bäck M, et al. Effects of the dual TP receptor antagonist and thromboxane synthase inhibitor EV-077 on human endothelial and vascular smooth muscle cells. Biochem Biophys Res Commun . 2013;441:393-8.

  26. Chis R, Sharma P, Bousette N, Miyake T, Wilson A, Backx PH, et al. α-Crystallin B prevents apoptosis after H2O2 exposure in mouse neonatal cardiomyocytes. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2012;303:H967–H978.

  27. Golenhofen N, Ness W, Wawrousek EF, Drenckhahn D. Expression and induction of the stress protein alpha-Bcrystallin in vascular endothelial cells. Histochem Cell Biol. 2002;117:203–9.

  28. McGreal RS, Kantorow WL, Chauss DC, Wei J, Brennan LA, Kantorow M, et al. αBCrystallin/ sHSP Protects Cytochrome c and Mitochondrial Function Against Oxidative Stress in Lens and Retinal Cells. Biochim Biophys Acta. 2012;1820:921-30.

  29. Ahmad MF, Singh D, Taiyab A, Ramakrishna T, Raman B, Rao CM. Selective Cu2+ binding, redox silencing, and cytoprotective effects of the small heat shock proteins αA- and αB-Crystallin. J Mol Biol. 2008;382:812-24.

  30. Cobb BA, Petrash JM. Characterization of alpha-crystallin plasma membrane binding. J Biol Chem. 2000;275:6664-72.




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