2005, Número 2
<< Anterior Siguiente >>
Perinatol Reprod Hum 2005; 19 (2)
Efecto de los retinoides en la diferenciación del trofoblasto humano en cultivo
Martínez-Flores A, Ortega-Calderón L, Ortega-Aguilar A, Maida-Claros R, Beltrán-Montoya J, Vadillo-Ortega F
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 23
Paginas: 77-86
Archivo PDF: 168.36 Kb.
RESUMEN
Objetivo: El presente estudio analiza el efecto de diferentes retinoides sobre la función y diferenciación celular del trofoblasto humano en cultivo.
Material y métodos: Se realizó un estudio experimental
in vitro, en donde se utilizaron vellosidades coriónicas y células de citotrofoblasto obtenidas de placentas de término de embarazos normales, que fueron cultivadas y estimuladas con concentraciones fisiológicas diferenciales de retinol (ROL), ácido 9-cis retinoico (CRET) y ácido
all-trans retinoico (TRET). Se analizaron los cambios en la actividad de la metaloproteinasa-9 (MMP-9) y la metaloproteinasa-2 (MMP-2), además de documentar las condiciones óptimas para el cultivo. En una segunda fase, se estimularon células de citotrofoblasto (CTB) aisladas y se documentaron los cambios morfológicos de formación de sincicio
in vitro al ser estimulados con los retinoides mencionados.
Resultados: Los explantes de placenta respondieron en forma dosis dependiente, en la actividad de MMP-2 y MMP-9 cuando fueron incubados en presencia de ROL y en menor proporción cuando se incubaron con CRET y TRET. El CTB aislado y estimulado con ROL y CRET formó sincicio en un lapso de 48 horas, en tanto que los estimulados con TRET lo hicieron hasta el 4o. día de incubación.
Conclusiones: La placenta y el trofoblasto aislado responden a los diferentes retinoides. La respuesta del CTB al ROL indica que el CTB cuenta con la maquinaria metabólica para transformar el retinol en CRET y TRET que tienen actividad biológica. El efecto de estos compuestos se pudiera expresar en la función de implantación y en la placenta en desarrollo.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Quadro L, Gamble M, Vogel S. Retinol and retinol binding protein: gut integrity and circulating immunoglobulins. J Infect Disease 2000; 182: 97.
Torres y Torres N. Avances en vitamina A y proteínas que unen retinoides. Rev Invest Clin 1995; 47: 149-60.
Woessner F, Nagase H. Matrix metallo-proteinases and TIMPS. EUA: Oxford University Press; 2000, p. 1-41.
Graham CH, Lala PK. Mechanisms of placental invasion of the uterus and their control. Biochem Cell Biol 1992; 70: 867-74.
McMaster M, Bass K. Human trophoblast invasion. Ann N Y Acad Sci 1994; 734: 122-31.
Aplin JD. The cell biology of human implantation. Placenta 1996; 17: 269-75.
Guibourdenche J. Retinoid receptors expression in human term placenta: involvement of RXR alfa in retinoid induced-hCG secretion. J Clin Endocrinol Metab 1998; 83: 1384-7.
Stephanou A, Sarlis HJ, Richards R, Handwerger S. Expression of retinoic acid receptor subtypes and cellular retinoic acid binding protein-II m RNAs during differentiation of human trophoblasts cells. Biophys Res Commun 1994; 202: 772-80.
Guibourdenche J, Tarrade A, Laurendeau I, Rochette-Egly C, Chambon P, Vidaud M, et al. Retinoids stimulate leptin synthesis and secretion in human syncytiotrophoblast. J Clin Endocrinol Metab 2000; 85: 2550-5.
Fisher GJ, Talwar HS. Retinoic acid inhibits induction of c-Jun protein by ultraviolet radiation that occurs subsequent to activation of mitogen-activated protein kinase pathway in human skin in vivo. J Clin Invest 1998; 101: 1432-40.
Aplin JD, Haigh T, Jones CJP, Church HJ, Vicóvac L. Development of cytotrophoblast columns from explanted first-trimester human placental villi: role of fibronectin and integrin a5b1. Biol Rep 1999; 60: 828-38.
Simán CM, Sibley CP, Jones CJP, Turner MA, Greenwood SL. 2001. The functional regeneration of syncytiotrophoblast in cultured explants of term placenta. Am J Physiol Regulatory Integrative Comp Physiol 2001; 280: R1116-R22.
Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature 1970; 227: 680-4.
Vadillo-Ortega F, González G, Furth E, Lei H, Muschel R, Stetler W, Strauss J. 92 kDa Type-IV Collagenase (Matrix Metallo-proteinase-9) activity in human amniocho-rion increases with labor. Am J Pathol 1995; 146: 148-56.
Bradford MA. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein dye binding. Ann Biochem 1976; 72: 248-54.
Kliman HJ, Nestle JE, Sermasi E, Sanger JE, Strauss JF. Purification, characterization and “in vitro” differentiation of cytrotrophoblasts from human term placentae. Endocrinol 1986; 118: 1567-82.
Guibourdenche J. Retinoid receptors expression in human term placenta: involvement of RXR alfa in retinoid induced-hCG secretion. J Clin Endocrinol Metab 1988; 83: 1384-7.
Stephanou A, Sarlis HJ, Richards R, Handwerger S. Expression of retinoic acid receptor subtypes and cellular retinoic acid binding protein-II m RNAs during differentiation of human trophoblasts cells. Biophys Res Commun 1994; 202: 772-80.
Guibourdenche J, Tarrade A, Laurendeau I, Rochette-Egly C, Chambon P, Vidaud M, et al. Retinoids Stimulate Leptin Synthesis and Secretion in Human Syncytiotrophoblast. J Clin Endocrinol Metab 2000; 85: 2550-5.
Blanchon L, Sauvant P, Bavik C, Gallot D, Charbonne F, Gouabau MC,et al. Human choriocarcinoma cell line JEG-3 produces and secretes actives retinoids from retinol. Hum Mol Rep 2002; 8: 485-93.
Breitmann TR, Collins SJ, Keene BR. Terminal differentiation of human promyelo-cytic leukemia cells in primary culture in response to retinoic acid. Blood 1981; 6: 1000.
Pan L, Brinckerhoff CE. Inhibition of collagenase gene expression in synovial fibroblasts by all-trans and 9-cis retinoic acid. Ann N Y Acad Sci 1994; 732: 335-47.
Connolly TJ, Clohisy JC, Shilt JS. Retinoic acid stimulates interstitial collagenase messenger ribonucleic acid in osteosarcoma cells. Endocrinol 2001; 135: 2542-8.