2001, Número 2
Comparación de las pruebas quantitative buffy coat, frotis grueso de sangre y observación directa para el diagnóstico de la infección por Dirofilaria immitis en perros de tres zonas geográficas de México
Bautista GCR, Arroyo RM, Velasco CO, Canto OL
Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 21
Paginas: 153-156
Archivo PDF: 38.97 Kb.
RESUMEN
El objetivo del presente estudio fue comparar el análisis quantitative buffy coat (QBC), frotis grueso de sangre (FGS) y observación directa (OD) para detectar la infección canina por Dirofilaria immitis. Noventa y cuatro muestras de sangre fueron obtenidas de perros de tres estados de México (48 de la ciudad de México, 31 de Puebla y 15 de Tabasco) y fueron examinadas por medio de QBC, FGS y OD; adicionalmente las muestras que tuvieron su origen en Puebla fueron también analizadas por medio de IFI y ELISA. Todas las muestras de la ciudad de México fueron negativas a D. immitis por medio de QBC, FGS y OD. Doce muestras (38.7%) de Puebla fueron positivas por medio de QBC, diez (32.3%) por FGS y dos (6.4%) por OD. Once muestras de Tabasco (73.3%) fueron positivas por medio de QBC y ELISA para antígeno del gusano del corazón, diez (66.6%) por IFI, nueve (60%) por FGS y cinco (33.3%) por OD. Las prevalencias obtenidas por medio de QBC fueron 0%, 38.7% y 73.3% para la ciudad de México, Puebla y Tabasco, respectivamente. En general, la sensibilidad obtenida fue de 100%, 82.6% y 30.4% para QBC, FGS y OD, respectivamente, mientras que la especificidad fue de 100%, para las tres pruebas. El análisis QBC mostró ser un método relativamente simple para detectar microfilarias de D. Immitis en sangre de perro que podría ser también útil para el diagnóstico de dirofilariasis.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
1. Simon F, Muro A, Cordero M, Martin J. A seroepidemiologic survey of human dirofilariosis in Western Spain. Trop Med Parasitol 1991;42:106-108.
2. Villanueva EJ, Rodriguez-Perez J. Immunodiagnosis of human dirofilariasis in Puerto Rico. Am J Trop Med Hyg 1993;48:536-541.
3. Simon F, Prieto G, Muro A, Cancrini G, Cordero M, Genchi C. Human humoral immune response to Dirofilaria species. Parassitologia 1997;39:397-400.
4. Milanes-de Campos JR, Barbas CS, Filomeno LT, Fernandez A, Minamoto H, Filho JV. Human pulmonary dirofilariasis: analysis of 24 cases from São Paulo, Brazil. Chest 1997;112:729-733.
5. Long GW, Rickman LS, Cross JH. Rapid diagnosis of Brugia malayi and Wuchereria bancrofti filariasis by an acridine orange/microhematocrit. J Parasitol 1990:76:278-281.
6. Freedman D, Berry RS. Rapid diagnosis of bancroftian filariasis by acridine orange staining of centrifuged parasites. Am J Trop Med Hyg 1992;47:787-793.
7. Bawden M, Slaten D, Malone J. QBC: rapid filaria diagnoses from blood – Manzonella ozzardi and Wucherreria bancrofti. Trans R Soc Trop Med Hyg 1994;88:66.
8. Brown SA, Barsanti JA. Quantitative buffy coat analysis for hematologic measurements of canine, feline, and equine blood samples and for detection of microfilaremia in dogs. Am J Vet Res 1988;49:321-324.
9. Wang LC. Evaluation of quantitative buffy coat analysis in the detection of canine Dirofilaria immitis infection: a model to determine its effectiveness in the diagnosis of human filariasis. Parasitol Res 1998; 84:246-248.
Wardlaw SC, Levine RA. A new technique to blood examination. Am Sci 1988:76:592-598.
Spielman A, Perrone JB, Teklehaimanot A, Balcha F, Wardlaw SC, Levine RA. Malaria diagnosis by direct observation of centrifuged samples of blood. Am J Trop Med Hyg 1988;39:337-342.
Tamashiro WK, Powers KG, Levy DA, Scott AL. Quantitative and qualitative changes in the humoral response of dogs through the course of infection with Dirofilaria immitis. Am J Trop Med Hyg 1985;34:292-301.
Chanteau S, Guidi C, Durosoir L. Efficiency of papain-treated microfilariae of Wuchereria bancrofti (var. pacifica) as antigen for serodiagnosis of bancroftian filariasis in French Polynesia. Trans R Soc Trop Med Hyg 1986;80:795-799.
Roth L, Brown L, Foster L, Nelson M, Reczeck D, von Schantz D. Comparison of three diagnostic tests for Dirofilaria immitis in low-incidence area. J Vet Diagn Invest 1993;5:647.
Palmer DF, Cavallaro JJ. Some concepts of quality control in immunoserology. In: Rose NR, Friedman H, editors. Manual of clinical immunology. Washington (DC): American Society for Microbiology, 1980:1078-1082.
Tizard I. Serologic assays. J Am Vet Med Assoc 1982;181:1162-1165.
Sámano GRF, Nájera FR, Herrera RD, Quiroz RH. Frecuencia de Dirofilaria immitis en perros de seis ciudades de México. Vet Méx 1996;27:107-109.
Levine ND. Nematode parasites of domestic animals and man. Minneapolis (Mn): Burgess, 1985.
Gómez-Bautista M, Rojo-Vázquez FA, Guerrero J. Filariatosis. En: Cordero-del Campillo M, Rojo-Vázquez FA, editores. Parasitología veterinaria. Madrid, España: McGraw-Hill- Interamericana, 1999:679-693.
Acha PN, Szyfres B. Zoonosis y enfermedades transmisibles comunes al hombre y a los animales. 2ª ed. Publicación Científica No. 503. Washington (DC): Organización Panamericana de la Salud, 1986.
Cancrini G, Allende E, Favia G, Bornay F, Anton F, Simon F. Canine dirofilariosis in two cities of southeastern Spain. Vet Parasitol 2000;92:81-86.