2001, Número 1
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Vet Mex 2001; 32 (1)
Efecto de la administración de líquido folicular equino libre de esteroides durante la fase lútea sobre la tasa de ovulación en ovejas Rambouillet
García ÁA, Hernández CJ, Valencia MJ
Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 30
Paginas: 1-5
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RESUMEN
Se evaluó el efecto de la administración de líquido folicular equino libre de esteroides (LFE) durante la fase lútea sobre la tasa de ovulación en ovejas de raza Rambouillet. Para este fin se utilizaron 26 ovejas que se encontraban en estro, éstas fueron sincronizadas previamente. El día nueve del ciclo (día 0 = día del estro), las ovejas se asignaron al azar a dos grupos. A los animales del grupo tratado (n = 13) se les aplicó 3 ml de LFE iv cada ocho horas durante 72 h. Las ovejas del grupo testigo (n = 13) recibieron solución salina fisiológica (SSF) en lugar de LFE. Todas las ovejas fueron tratadas con 15 mg de PGF2a después de la última aplicación del LFE o SSF, y se detectaron estros con machos provistos de mandil. El día seis posterior al estro se determinó la tasa ovulatoria mediante el conteo de los cuerpos lúteos a través de laparoscopia. Se comparó la proporción de ovejas con ovulación múltiple y simple, así como el número de ovulaciones, mediante las pruebas Ji cuadrada y “t” de Student, respectivamente. En cuatro ovejas del grupo tratado y en cinco del grupo testigo se tomaron muestras sanguíneas cada 4 h durante 144 h a partir de la administración de LFE, en aquéllas se determinaron las concentraciones de FSH. Estas últimas fueron comparadas mediante análisis de varianza. La tasa ovulatoria fue mayor (P ‹ 0.05) en las ovejas tratadas (2.0 ± 0.29) que en las testigo (1.23 ± 0.12), la proporción de ovejas con ovulación múltiple para el grupo tratado fue de 69.23% y 23.07% para el grupo testigo (P &38249; 0.05). Las concentraciones de FSH no difirieron estadísticamente (P › 0.05) entre grupos en los días evaluados, y no se observó un incremento en sus niveles después de suspender la administración de LFE. Se concluye que el tratamiento con LFE durante la fase lútea 72 h antes de la aplicación de PGF2a incrementó la tasa ovulatoria sin modificar las concentraciones de FSH.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
1. Findlay JK, Clark IJ, Robertson DM. Inhibin concentration in ovarian and jugular venous plasma and relationship of inhibin with follicle-stimulating hormone and luteinizing hormone during the ovine estrous cycle. J Endocrinol 1990;126:528-535.
2. Leversha LJ, Robertson DM, Vos FL, Morgan FJ, Hearn MTW, Wettenhall REH, et al. Isolation of inhibin from ovine follicular fluid. J Endocrinol 1987;113:213-221.
3. Knight PG. Identification and purification of inhibin and inhibin-related proteins. J Reprod Fertil 1991;43:111-123.
4. Taya K, Kaneko H, Watanabe G, Sasamoto S. Inhibin and secretion of FSH in oestrous cycles of cows and pigs. J Reprod Fertil 1991;43(Suppl):151-162.
5. Roser JF, Mc Cue PM, Hoye E. Inhibin activity in the mare and stallion. Dom Anim Endocrinol 1994;11:87-100.
6. Miller K, Crister JK, Rowe RF, Ginther OJ. Ovarian effects of bovine follicular fluid treatment in sheep and cattle. Biol Reprod 1979;21:537-544.
7. McNelly AS. Changes in FSH and the pulsatile secretion of LH during the delay in oestrus induced by treatment of ewes with bovine follicular fluid. J Reprod Fertil 1984;72:165-172.
8. Hunter MG, Southee JA, Lamming GE. Function of abnormal corpora lutea in vitro after Gn-RH-induced ovulation in the anoestrous ewe. J Reprod Fertil 1988;84:139-148.
9. Miller DW, Martin GB. Increases in ovulation rate and gonadotrophin concentration in goats and Merino sheep after treatment with bovine follicular fluid. Anim Reprod Sci 1993;31:225-236.
Wallace JM, McNeilly AS, Baird DT. Ovulation rate and embryo survival in Damline ewes after treatment with bovine follicular fluid in the luteal phase of the oestrous cycle. J Reprod Fertil 1985;75:101-109.
Hernández CJ, Murcia MC, Valencia MJ, Rojas MS, Zárate MJ, Zarco QL. Efecto del líquido folicular equino libre de esteroides sobre la secreción de FSH en ovejas en anestro estacional y la presentación del estro inducido con PGF2a en ovejas ciclando. Vet Méx 1997;28:117-121.
Miller KF, Wesson JA, Ginther OJ. Changes in concentrations of circulating gonadotropins following administration of equine follicular fluid to ovariectomized mares. Biol Reprod 1979;21:867-872.
Bergfelt DR, Ginther OJ. Delayed follicular development and ovulation following inhibition of FSH with equine fluid in the mare. Theriogenology 1985;24:99-109.
Gremmes S. The secretional profile of gonadotrophines in the mare following hormonal intervention, doctor thesis. Hannover, Germany: Tierärztliche Hochschule Hannover, 1990.
Hernández CJ. Control de la longitud de la fase lútea en ovejas mediante la administración de líquido folicular equino libre de esteroides (tesis de doctorado en ciencias veterinarias). México (DF) México: Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. UNAM, 1996.
García ME. Modificación del sistema de clasificación climatológica de Koeppen. México (DF): Instituto de Geografía, Universidad Nacional Autónoma de México, 1981.
Seeger KH, Klatt PR. Laparoscopy in the sheep and goat. In: Harrison RM, Wildt DE, editors. Animal laparoscopy. Baltimore, (Ma): Williams and Wilkins, 1980:107-120.
Fitzgerald JA, Stellflug JN. Laparoscopy and artificial insemination of sheep. Memorias del Curso de Actualización de Ovinos; 1994 marzo 22–25; Toluca, Edo. de México. Toluca, Edo de México: Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Autónoma del Estado de México, 1994:89-97.
Steel RGD, Torrie JH. Bioestadística. Principios y procedimientos. México (DF): McGraw-Hill, 1985.
Vosniakiu A, Karagiannidis A, Liberopoulos A, Koptopoulos G, Tsakalof P. Ovulation and lambing rates in Karaguniki ewes after treatment with follicular fluid. Theriogenology 1991;35:785-795.
Mejía VO, Zarco QL, Rojas MS, Rosas GM, Valencia MJ. Efecto del líquido folicular equino y la somatotropina bovina en la sobrevivencia de embriones ovinos transferidos asincrónicamente. Vet Méx 1998;29:359-367.
Campbell BK, Picton HM, Mann GE, McNeilly AS, Baird DT. Effect of steroid and inhibin-free ovine follicular fluid on ovarian follicles and ovarian hormone secretion. J Reprod Fertil 1991;93:81-96.
Scaramuzzi RJ, Adams NR, Baird DT, Campbell BK, Downing JA, Findlay JK, et al. A model for follicle selection and the determination of ovulation rate in the ewe. Reprod Fertil Dev 1993;5:459-478.
Findlay JK, Drummond AE, Fry RC. Intragonadal regulation of follicular development and ovulation. Anim Reprod Sci 1996;42:321-331.
Gutierrez CG, Saharrea A, Palacios T, Alvarez J, Aguilera I, López N. The effect of short-term administration of a glycogenic solution on plasma glucose concentrations and ovulation rate in Pelibuey sheep. J Reprod Fertil 2000;25(Abstr):143.
Campbell BK, Picton HM, McNeilly AS, Baird DT. Effect of FSH on ovarian inhibin secretion in anoestrous ewes. J Reprod Fertil 1991;91:501-509.
Campbell BK, Webb R. Evidence that inhibin has autocrine and paracrine actions in controlling ovarian function in sheep. J Reprod Fertil 1995;15 (Abstr):48.
Law AS, Baxter G, Logue DN, O’Shea T, Webb R. Evidence for the action of bovine follicular fluid factor(s) other than inhibin in suppressing follicular development and delaying oestrus in heifers. J Reprod Fertil 1992;96:603-616.
McNeilly AS. Effect of changes in FSH induced by follicular fluid and FSH infusion in the preovulatory phases on subsequent ovulation rate and corpus luteum function in the ewe. J Reprod Fertil 1985;4:661-668.
McLeod BJ, McNelly AS. Manipulation of plasma FSH concentrations by administration of bFF effects LH secretion in seasonally anoestrus ewes. Anim Reprod Sci 1991;25:115-124.