medigraphic.com
ISSN 0016-3813 (Impreso)

2015, Número 1

<< Anterior Siguiente >>

Gac Med Mex 2015; 151 (1)


Seroprevalencia y factores de riesgo asociados a riquetsiosis (Rickettsia rickettsii) en humanos de Ensenada, Baja California, México

Field-Cortazares J, Escárcega-Ávila AM, López-Valencia G, Barreras-Serrano A, Tinoco-Gracia L

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 30
Paginas: 42-46
Archivo PDF: 78.62 Kb.


RESUMEN

Introducción: En México la riquetsiosis causada por R. rickettsii (bacteria intracelular obligada) es transmitida por Rhipicephalus sanguineus y es capaz de infectar a vertebrados, incluidos los seres humanos. Los síntomas son: fiebre alta, cefalea, mialgia, náusea, vómito, dolor abdominal y tos. La mortalidad puede ser de hasta el 30% en pacientes no tratados. Objetivos: Demostrar que existe riquetsiosis en Ensenada, Baja California (México), porque no hay casos reportados en seres humanos. Materiales y métodos: El presente estudio, prospectivo, descriptivo, seccional y cruzado, fue efectuado en el lapso comprendido entre octubre de 2009 y agosto de 2011 e incluyó 384 muestras de pacientes mayores de un año de edad de Ensenada (Baja California). Los anticuerpos contra R. rickettsii fueron medidos con el kit R. rickettsii ELISA® Helica Biosystems, Inc., de uso en perros y adaptado para humanos utilizando un conjugado antiinmunoglobulina G (anti-IgG) humana. Para determinar la sensibilidad y la especificidad en humanos se sometieron 32 muestras a IFA. Para el diagnóstico molecular de R. rickettsii en perros y garrapatas se utilizaron iniciadores específicos. Resultados: La seroprevalencia ajustada de riquetsiosis por R. rickettsii en humanos fue del 3.9% (intervalo de confianza [IC] del 95%: 0.8-5.3) y la seropositividad no mostró sucesión con el sexo, la edad, la ocupación, la presencia de perros en el hogar, el programa de desparasitación de mascotas contra garrapatas, el tipo de patio y la movilidad de perros entre el hogar y la calle. Conclusiones: Del resultado de acuerdo sustancial de k entre el ensayo por inmunoabsorción ligado a enzimas (ELISA) e IFA se deduce que los resultados de seroprevalencia de este trabajo son confiables.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Raoult D, Parola P. Rickettsial diseases. 1.a ed. Informa healthcare; 2007.

  2. La Scola B, Raoult, D. Laboratory diagnosis of rickettsioses: current approaches to diagnosis of old and new rickettsial diseases. J Clin Microbiol. 1997;35(11):2715-27.

  3. Tinoco-Gracia L, Quiroz-Romero H, Quintero-Martínez MT, et al. Prevalence of Rhipicephalus sanguineus ticks on dogs in a region on the Mexico-USA border. Vet Rec. 2009;164(2):59-61.

  4. Silverman DJ. Rickettsia rickettsii-induced cellular injury in human vascular endothelium in vitro. Infect Immun. 1984;44(3):545-53.

  5. Eremeeva ME, Dasch GA, Silverman DJ. Quantitative analyses of variations in the injury of endothelial cells elicited by 11 isolates of Rickettsia riquettsii. Clin Diagn Lab Immunol. 2001;8(4):788-96.

  6. Walker DH. Rocky Mountain Spotted Fever: a seasonal alert. Clin Infect Dis. 1995;20(5):1111-7.

  7. Kim CM, Yi YH, Yu DH, et al. Tick-borne rickettsial pathogens in ticks and small mammals in Korea. Appl Environ Microbiol. 2006;72(9):5766-76.

  8. Labruna MB, Whitworth T, Horta MC, et al. Rickettsia species infecting Amblyomma cooperi ticks from an area in the state of Sao Paulo, Brazil, where Brazilian spotted fever is endemic. J Clin Microbiol. 2004;42(1):90-8.

  9. Stenos J, Graves SR, Unsworth NB. A highly sensitive and specific real- time PCR assay for the detection of spotted fever and typhus group Rickettsiae. Am J Trop Med Hyg. 2005;73(6):1083-5.

  10. Tzianabos T, Anderson BE, McDade JE. Detection of Rickettsia riquettsii DNA in clinical specimens by using polymerase chain reaction technology. J Clin Microbiol. 1989;27(12):2866-8.

  11. Kovácová E, Kazár J. Rickettsial diseases and their serological diagnosis. Clin Lab. 2000;46(5-6):239-45.

  12. Anaya E, Morón C, Arias P, Chauca J, Román R. Serodiagnóstico de rickettsiosis por ELISA e inmunofluorescencia IFI IgM. Ministerio de Salud, Instituto Nacional de la Salud, Centro de Información y Documentación Científica; 2007.

  13. Devore J, Peck R. Statistics. The exploration and analysis of data. 4.a ed. Duxbury-Thomson; 2001.

  14. Landis JR, Koch GG. An application of hierarchical kappa-style statistics in the assessment of majority agreement among multiple observers. Biometrics. 1977;33(2):363-74.

  15. Halle S, Dasch G. A use of sensitive microplate enzyme-linked inmmunosorbent assay in retrospective serological analysis of a laboratory population at risk to infection with typhus group…

  16. Labruna MB, Pacheco RC, Richtzenhain LJ, Szabó MP. J. Isolation of Rickettsia rhipicephali and Rickettsia bellii from Haemaphysalis juxtakochi Ticks in the state of Sao Paulo, Brazil. Appl Environ Microbiol. 2007;73(3):869-73.

  17. Greiner M, Gardner IA. Application of diagnostic tests in veterinary epidemiologic studies. Prev Vet Med. 2000;45(1-2):43-59.

  18. SAS, I. I. SAS/STAT® 9.1 User’s Guide. (SAS Institute Inc, 2004).

  19. Zavala-Castro JE, Dzul-Rosado KR, León JJ, Walker DH, Zavala- Velázquez JE. An increase in human cases of spotted fever rickettsiosis in Yucatan, Mexico, involving children. Am J Trop Med Hyg. 2008;79(6):907-10.

  20. Elchos BN, Goddard J. Implications of presumptive fatal Rocky Mountain spotted fever in two dogs and their owner. J Am Vet Med Assoc. 2003; 223(10):1450-2.

  21. Satoh H, Tsuneki A, Inokuma H, et al. Seroprevalence of antibodies against spotted fever group rickettsia among dogs and humans in Okinawa, Japan. Microbiol Immunol. 2001;45(1):85-7.

  22. Zavala-Velazquez JE, Ruiz-Sosa J, Vado-Solis I, Billings AN, Walker DH. Serologic study of the prevalence of rickettsiosis in Yucatan: evidence for a prevalent spotted fever growth rickettsiosis. Am J Trop Med Hyg. 1999;61(3):405-8.

  23. Pinter A, Horta MC, Pacheco RC, Moraes-Filho J, Labruna MB. Serosurvey of Rickettsia spp. in dogs and humans from an endemic area from Brazilian spotted fever in the State of São Paulo, Brazil. Cad Saude Publica. 2008;24(2):247-52.

  24. Graf PC, Chretien JP, Ung L, Gaydos JC, Richards AL. Prevalence of seropositivity to spotted fever group rickettsiae and Anaplasma phagocytophilum in a large, demographically diverse US sample. Clin Infect Dis. 2008;46(1):70-7.

  25. Hidalgo M, Sánchez R, Orejuela L, Hernández J, Walker DH, Valbuena G. Prevalence of antibodies against spotted fever group rickettsiae in a rural area of Colombia. Am J Trop Med Hyg. 2007;77(2):378-80.

  26. Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Fatal cases of Rocky Mountain spotted fever in family clusters/three states, 2003. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 2004;53(19):407-10.

  27. De Lara Huerta J, Cárdenas Barragán R. Fiebre manchada de las Montañas Rocosas en pediatría. Revisión clínica de una serie de 115 casos. Revista de Enfermedades Infecciosas en Pediatría. 2008;XXII.

  28. Bustamante MJ, Pon MA. Actualización en la vigilancia epidemiológica de «rickettsiosis» (Segunda de Dos Partes). Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica. 2010;27.

  29. Clements ML, Dumler JS, Fiset P, Wisseman CL Jr, Snyder MJ, Levine MM. Serodiagnosis of Rocky Mountain spotted fever: comparison of IgM and IgG enzyme-linked immunosorbent assays and indirect fluorescent antibody test. J Infect Dis. 1983;148(5):876-80.

  30. Jones D, Anderson B, Olson J, Greene C. Enzyme-linked immunosorbent assay for detection of human immunoglobulin G to lipopolysaccharide of spotted fever group rickettsiae. J Clin Microbiol. 1993; 31(1):138-41.




2020     |     www.medigraphic.com