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ISSN 0187-5337 (Impreso)
Instituto Nacional de Perinatología

2014, Número 4

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Perinatol Reprod Hum 2014; 28 (4)


Efecto in vitro del pentóxido de vanadio (V2O5) sobre la calidad espermática

Méndez Y, Báez F, Villamediana P

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 29
Paginas: 187-192
Archivo PDF: 270.75 Kb.


RESUMEN

El vanadio es un metal pesado considerado como un contaminante ambiental, producto de la manipulación antropogénica, que incide sobre el potencial reproductivo masculino, especialmente sobre la movilidad espermática. Esta investigación tuvo como objetivo determinar el efecto in vitro del pentóxido de vanadio sobre la calidad espermática. Se incubaron suspensiones de espermatozoides humanos por 24 horas bajo concentraciones de 0, 1 y 2 ppm V2O5, se realizó la valoración de la movilidad y vitalidad espermática, la integridad de membrana, la reacción acrosómica y la integridad de la cromatina espermática. El V2O5 alteró de manera significativa la movilidad espermática, específicamente los patrones de movilidad espermática moderado (p ‹ 0.01), lento (p = 0.01) e inmóvil (p ‹ 0.01). Los grupos tratados con V2O5 presentaron un porcentaje de espermatozoides vivos significativamente mayor al grupo control (p ‹ 0.01). La integridad de membrana y reacción acrosómica no resultaron afectadas por la exposición de espermatozoides humanos a V2O5 (p › 0.05). De igual modo, no se observaron alteraciones del material nuclear (p › 0.05). El vanadio es capaz de alterar la movilidad y vitalidad espermática sin inducir cambios sobre la integridad de membrana y la cromatina espermática.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Rodríguez J, Altamirano M. Vanadio: contaminación, metabolismo y genotoxicidad. Rev Int Contaminación Ambiental. 2006; 22: 173-89.

  2. Pacheco J, Salas P, Galli C. Actividad insulino-mimética del vanadio. Rev Quím (Venezuela). 2006; 10: 3-10.

  3. Korbecki J, Baranowska-Bosiacka I, Gutowska, Chlubek D. Biochemical and medical importance of vanadium compounds. Acta Biochim Pol. 2012; 59: 195-200.

  4. Altamirano-Lozano M, Álvarez-Barrera L, Basurto-Alcántara F, Valverde M, Rojas E. Reprotoxic and genotoxic studies of vanadium pentoxide in male mice. Teratogen Carcin Mut. 1996; 16: 7-17.

  5. Jain G, Pareek H, Sharma S, Bhardwaj M, Khajja B. Reproductive toxicity of vanadyl sulphate in male rats. J Health Sci. 2007; 53: 137-41.

  6. D’Cruz O, Ghosh P, Uckun F. Spermicidal activity of metallocene complexes containing vanadium (IV) in humans. Biol Reprod. 1998; 58: 1515-26.

  7. Giraldo N, Correa J, Vásquez N. Evaluación del efecto de la refrigeración sobre la calidad del semen equino. Revista CES. 2006; 2: 8-16.

  8. Valeris R, Villamediana P, Quintero A, Parra O, Sandoval J, Ghebrehiwet B. Expression and distribution of the complement receptor gC1qR in bovine sperm. Revista Científica, FCV-LUZ. 2008; 18: 22-7.

  9. Sousa A, Tavares R, Velez de la Calle J, Figueiredo H, Almeida V, Almeida-Santos T et al. Dual use of diff-quick-like stains for the simultaneous evaluation of human sperm morphology and chromatin status. Human Reprod. 2009; 24: 28-36.

  10. Fernández J, Muriel L, Rivero M, Goyanes V, Vazquez R, Alvarez J. The sperm chromatin dispersion test: a simple method for the determination of sperm DNA fragmentation. J Androl. 2003; 24: 59-66.

  11. Younis A, Zuelke K, Harper K, Oliveira M, Brackett B. In vitro fertilization of goat oocytes. Biol Reprod. 1991; 44: 1177-82.

  12. Lazaros L, Vartholomatos G, Hatzi E, Kaponis A, Makrydimas G, Kalantaridou S et al. Assessment of sperm chromatin condensation and ploidy status using flow cytometry correlates to fertilization, embryo quality and pregnancy following in vitro fertilization. J Assist Reprod Genet. 2011; 28: 885-91.

  13. Robinson L, Gallos I, Conner S, Rajkhowa M, Miller D, Lewis S et al. The effect of DNA sperm fragmentation on miscarriage rates: a systematic review and meta-analysis. Hum Reprod. 2012; 27: 2908-17.

  14. Gibbons I, Cosson M, Evans J, Gibbons B, Houck B, Martinson K et al. Potent inhibition of dynein adenosinetriphosphatase and of the motility of cilia and sperm flagella by vanadate. Proc Natl Acad Sci. 1978; 75: 2220-4.

  15. Macara I. Vanadium, an element in search of a role. Trends Biochem Sci. 1980; 5: 92-4.

  16. Benabe J, Echegoyen L, Pastrana B, Martínez-Maldonado M. Mechanism of inhibition of glycolysis by vanadate. J Biol Chem. 1987; 262: 9555-60.

  17. Ahmed A, Arakawa H, Tajmir-Riahi H. Binding of oxovanadium ions to the major and minor grooves of DNA duplex: stability and structural models. Biochem Cell Biol. 2006; 84: 677-83.

  18. Miller D, Hollenbeck B, Smith G, Randolph J, Christman G, Smith Y et al. Processed total motile sperm count correlates with pregnancy outcome after intrauterine insemination. Urology. 2002; 60: 497-501.

  19. Miki K, Qu W, Goulding E, Willis W, Bunch D, Strader L et al. Glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase-S, a sperm-specific glycolytic enzyme, is required for sperm motility and male fertility. Proc Natl Acad Sci. 2004; 101: 16501-6.

  20. Siva A, Yeung C, Cooper T, Shivaji S. Antimicrobial drug ornidazole inhibits hamster sperm capacitation, in vitro. Reprod Toxicol. 2006; 22: 702-9.

  21. Ray R, Ghosh B, Rana A, Chatterjee M. Suppression of cell proliferation, induction of apoptosis and cell cycle arrest: chemopreventive activity of vanadium in vivo and in vitro. Int J Cancer. 2006; 120: 13-23.

  22. Rodríguez-Gil J. Energy management of mature mammalian spermatozoa. In: Alemayehu L, editor. Success in artificial insemination-quality of semen and diagnostics employed. Intech; 2013. p. 153-174.

  23. Kim Y, Haidl G, Schaefer M, Egner U, Mandal A, Herr J. Compartmentalization of a unique ADP/ATP carrier protein SFEC (sperm flagellar energy carrier, AAC4) with glycolytic enzymes in the fibrous she at of the human sperm flagellar principal piece. Dev Biol. 2007; 302: 463-76.

  24. Shrivastava S, Jadon A, Shukla S, Mathur R. Chelation therapy and vanadium: effect on reproductive organs in rats. Indian J Exp Biol. 2007; 45: 515-23.

  25. Roess D, Smith S, Winter P, Zhou J, Dou P, Baruah B et al Effects of vanadium-containing compounds on membrane lipids and on microdomains used in receptor-mediated signaling. Chemis Biodivers. 2008; 5: 1558-70.

  26. Castellini C, Mourvaki E, Sartini B, Cardinali F, Moretti E, Collodel G et al. In vitro toxic effects of metal compounds on kinetic traits and ultrastructure of rabbit spermatozoa. Reprod Toxicol. 2009; 27: 46-54.

  27. Rodríguez-Mercado J, Mateos-Nava R, Altamirano-Lozano M. DNA damage induction in human cells exposed to vanadium oxides in vitro. Toxicol in Vitro. 2011; 25: 1996-2002.

  28. Ivancsits S, Pilger A, Diem E, Schaffer A, Rudiger H. Vanadate induces DNA strand breaks in cultured human fibroblasts at doses relevant to occupational exposure. Mutat Res. 2002; 519: 25-35.

  29. Björndahl L, Kvist U. Human sperm chromatin stabilization: a proposed model including zinc bridges. Mol Hum Reprod. 2010; 16: 23-9.




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