2013, Número 2
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Dermatología Cosmética, Médica y Quirúrgica 2013; 11 (2)
Terapia con larvas de mosca para heridas crónicas: alternativa en una época de creciente resistencia a los antimicrobianos
Ríos YJM, Mercadillo PP, Yuil RE, Ríos CM
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 27
Paginas: 134-141
Archivo PDF: 157.40 Kb.
RESUMEN
Desde la antigüedad se han utilizado larvas de mosca para tratar
heridas crónicas, mas esta terapia fue abandonada con el
advenimiento de los antibióticos. La creciente resistencia antimicrobiana
y la gran dificultad para desarrollar nuevos antibióticos
han ocasionado que, en años recientes, se retomara el
uso de este tratamiento y así, hoy día, se utilizan larvas de
Lucilia
sericata producidas asépticamente en laboratorios especializados
para evitar la contaminación secundaria de las heridas. El
mecanismo de acción de la terapia con larvas no es del todo
comprendido, pero su excelente efecto para desbridar tejidos
desvitalizados es indiscutible. Diversos estudios han encontrado
que la terapia con larvas también favorece la formación de tejido
de granulación y elimina infecciones en las heridas, aun las
causadas por bacterias resistentes a múltiples antibióticos como
Staphylococcus aureus resistente a la meticilina (sarm). Además,
contrario a lo esperado, la mayoría de los pacientes con heridas
crónicas tolera muy bien la terapia con larvas. Por lo anterior,
la terapia de heridas crónicas con larvas de mosca vuelve a ser
una valiosa estrategia para el tratamiento de heridas crónicas
de difícil manejo.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Van der Plas MJ, Baldry M, van Dissel JT, Jukema GN, Nibbering PH. “Maggot secretions suppress pro-inflammatory responses of human monocytes through elevation of cyclic AMP”. Diabetologia 2009; 52(9): 1962-1970.
Van der Plas MJ, Dambrot C, Dogterom-Ballering HC, Kruithof S, van Dissel JT, Nibbering PH. “Combinations of maggot excretions/secretions and antibiotics are effective against Staphylococcus aureus biofilms and the bacteria derived therefrom”. J Antimicrob Chemother 2010; 65(5): 917-923.
Soares MO, Iglesias CP, Bland JM, Cullum N, Dumville JC, Nelson EA, et al. “Cost effectiveness analysis of larval therapy for leg ulcers”. BMJ 2009 19; 338: b825.
Gentil I, Smirnova P. Larvaterapia. “Revisión sistemática de evidencia científica”. Revista Internacional de Ciencias Podológicas 2009; 3: 45-52.
Nigam Y, Bexfield A, Thomas S, Ratcliffe NA. “Maggot Therapy: The Science and Implication for CAM Part I-History and Bacterial Resistance”. Evid Based Complement Alternat Med 2006; 3(2): 223-227.
Chan DC, Fong DH, Leung JY, Patil NG, Leung GK. “Maggot debridement therapy in chronic wound care”. Hong Kong Med J 2007; 13(5): 382-386.
van der Plas MJ, Jukema GN, Wai SW, Dogterom-Ballering HC, Lagendijk EL, van Gulpen C, et al. “Maggot excretions/secretions are differentially effective against biofilms of Staphylococcus aureus and Pseudomonas aeruginosa”. J Antimicrob Chemother 2008; 61(1): 117-122.
Whitaker IS, Twine C, Whitaker MJ, Welck M, Brown CS, Shandall A. “Larval therapy from antiquity to the present day: mechanisms of action, clinical applications and future potential”. Postgrad Med J 2007; 83(980): 409-413.
Nigam Y, Bexfield A, Thomas S, Ratcliffe NA. “Maggot therapy: the science and implication for CAM part II-maggots combat infection”. Evid Based Complement Alternat Med 2006; 3(3): 303-308.
Andersen AS, Sandvang D, Schnorr KM, Kruse T, Neve S, Joergensen B, et al. “A novel approach to the antimicrobial activity of maggot debridement therapy”. J Antimicrob Chemother 2010; 65(8): 1646-1654.
Steenvoorde P, Jacobi CE, Van Doorn L, Oskam J. “Maggot debridement therapy of infected ulcers: patient and wound factors influencing outcome –a study on 101 patients with 117 wounds”. Ann R Coll Surg Engl 2007; 89(6): 596-602.
Collier R. “Medicinal maggots cross border at a crawl”. CMAJ 2010; 182(2): E123-124.
Petherick SE, O’Meara S, Spilsbury K, Iglesias CP, Nelson EA, Torgerson DJ. “Patient acceptability of larval therapy for leg ulcer treatment: a randomised survey to inform the sample size calculation of a randomised trial”. BMC Med Res Methodol 2006; 6: 43.
Collier R. “New interest in maggot therapy”. CMAJ 2010; 182(2): E121- 122.
Rueda LC, Ortega LG, Segura NA, Acero VM, Bello F. “Lucilia sericata strain from Colombia: Experimental colonization, life tables and evaluation of two artificial diets of the blowfly Lucilia sericata (Meigen) (Diptera: Calliphoridae), Bogotá, Colombia strain”. Biol Res 2010; 43(2): 197-203.
Figueroa L, Flores J, Rodríguez S. “Método de cultivo de larvas de moscas Lucilia sericata para terapia larval”. Parasitol Latinoam 2007; 62: 79-82.
Wolff H, Hansson C. “Rearing Larvae of for chronic ulcer treatment –an improved method”. Acta Derm Venereol 2005; 85(2): 126-131.
Zhang Z, Wang S, Diao Y, Zhang J, Lv D. “Fatty acid extracts from Lucilia sericata larvae promote murine cutaneous wound healing by angiogenic activity”. Lipids Health Dis 2010; 9: 24.
Dumville JC, Worthy G, Soares MO, Bland JM, Cullum N, Dowson C, et al. “VenUS II: a randomised controlled trial of larval therapy in the management of leg ulcers”. Health Technol Assess 2009; 13(55): 1-182.
Dumville JC, Worthy G, Bland JM, Cullum N, Dowson C, Iglesias C, et al. “Larval therapy for leg ulcers (VenUS II): randomised controlled trial”. BMJ 2009; 338: b773.
Jaklic D, Lapanje A, Zupancic K, Smrke D, Gunde-Cimerman N. “Selective antimicrobial activity of maggots against pathogenic bacteria”. J Med Microbiol 2008; 57(Pt 5): 617-625.
Andersen AS, Joergensen B, Bjarnsholt T, Johansen H, Karlsmark T, Givskov M, et al. “Quorum-sensing-regulated virulence factors in Pseudomonas aeruginosa are toxic to Lucilia sericata maggots”. Microbiology 2010; 156(Pt 2): 400-407.
Arora S, Baptista C, Lim CS. “Maggot metabolites and their combinatory effects with antibiotic on Staphylococcus aureus”. Ann Clin Microbiol Antimicrob 2011; 10: 6.
Cazander G, van Veen KE, Bouwman LH, Bernards AT, Jukema GN. “The influence of maggot excretions on PAO1 Biofilm formation on different biomaterials”. Clin Orthop Relat Res 2009; 467(2): 536-545.
van der Plas MJ, van Dissel JT, Nibbering PH. “Maggot secretions skew monocyte-macrophage differentiation away from a pro-inflammatory to a pro-angiogenic type”. PLoS One 2009; 4(11): e8071.
Horobin AJ, Shakesheff KM, Pritchard DI. “Promotion of human dermal fibroblast migration, matrix remodeling and modification of fibroblast morphology within a novel 3D model by Lucilia sericata larval secretions”. J Invest Dermatol 2006; 126(6): 1410-1418.
Arrivillaga J, Rodríguez J, Oviedo M. “Evaluación preliminar en un método animal de la terapia con larvas de Lucilia sericata para el tratamiento de la leishmaniasis cutánea”. Biomédica 2008; 28: 305-310.