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ISSN 1025-0255 (Digital)

2014, Número 5

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AMC 2014; 18 (5)


Densidad superficial nuclear de hepatocitos de hígados sometidos a un factor estimulante humoral en ratones

Concepción OM, Díaz RPA, Rodríguez AT

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 17
Paginas: 519-531
Archivo PDF: 409.96 Kb.


RESUMEN

Fundamento: la regeneración hepática es la respuesta fundamental del hígado frente a los diversos estímulos internos y externos. Es multifactorial inducida, que origina cambios secuenciales en la expresión génica, la estructura y organización de las células hepáticas.
Objetivos: analizar el comportamiento de la densidad superficial de los núcleos de los hepatocitos según la posición que ocupan en las zonas del lóbulo hepático medio de ratones sometidos a citosol regenerativo.
Método: se estudió la densidad superficial de los núcleos de hepatocitos con el uso de la morfometría en 14 lóbulos medios de hígados de ratones, que fueron sometidos a dosis de citosol de hígado regenerativo al inicio del experimento. Las muestras fueron tomadas cada 12 horas durante ocho días. El corte se dividió en zonas proximal, medial y distal al hilio donde se realizaron las determinaciones.
Resultados: los valores promedios y su desviación estándar en la zonas fueron: proximal 701,23 ± 135,83 (μm2.103), medial 707,48 ± 46,87 (μm2.103) y distal 682,48 ± 125,21 (μm2.103). Al comparar los resultados mediante el análisis de varianza se aprecia que no existen diferencias en el comportamiento de los promedios en las tres zonas. Al comparar la fase inicial con la fase final del experimento se aprecia diferencias significativas (p≤0,05) en las mismas zonas, con un predominio de la zona proximal y distal.
Conclusiones: en las tres zonas del lóbulo el comportamiento de la densidad superficial de núcleos de hepatocitos ocurre de manera similar, con un sentido al incremento al final del experimento, lo que se corroboró con la aplicación de la prueba de la t de Student. Los incrementos más significativos ocurrieron en la zona proximal y distal, aunque en todas las zonas existen diferencias significativas entre los valores obtenidos en la primera mitad de tiempo del experimento respecto a la parte final.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Best DH, Butz GM, Coleman WB. Cytokine-dependent activation of small hepatocyte-like progenitor cells in retrorsine-induced rat liver injury. Exp Mol Pathol. 2010;88:7–14.

  2. García Cardona A. Biología, Patobiología, Bioclínica y Fármaco-terapéutica Humana del Factor de Crecimiento Hepático (HGF). Salud UIS. 2007;39:30-42.

  3. Tunon MJ, Alvarez M, Culebras JM, Gonzalez-Gallego J. Modelos animales de fallo hepético fulminante. Nutr Hosp. 2007;22(2):199-209.

  4. Trebicka J, Hennenberg M, Odenthal M, Shir K, Klein S, Granzow M, et al. Atorvastatin attenuates hepatic fibrosis in rats after bile duct ligation via decreased turnover of hepatic stellate cells. J Hepatol. 2010 Oct;53(4):702-12.

  5. Maeno S, Kondo F, Sano K, Takada T, Asano T. Morphometric and immunohistochemical study of cholangiolocellular carcinoma: comparison with non-neoplastic cholangiole, interlobular duct and septal duct. J Hepatobiliary Pancreat Sci. 2012 May;19(3):289-96.

  6. Neef M, Ledermann M, Saegesser H, Schneider V, Reichen J. Low-dose oral rapamycin treatment reduces fibrogenesis, improves liver function, and prolongs survival in rats with established liver cirrhosis. J Hepatol. 2006 Dec;45(6):786-96.

  7. Aguilar JC. Función inmunológica del hígado desde la perspectiva de la vacunación terapéutica. Biotecnol Aplic. 2009;26:1-9.

  8. Chang D1, Ramalho LN, Ramalho FS, Martinelli AL, Zucoloto S. Hepatic stellate cells in human schistosomiasis mansoni: a comparative immunohistochemical study with liver cirrhosis. Acta Trop. 2006 Mar;97(3):318-23.

  9. Lönn J, Shahzad F, Uhlin F, Bengtsson T, Almroth J. High concentration but low biological activity of hepatocyte growth factor in patients with chronic renal failure. Advances in Biosc Biotech. 2012;3:516-23.

  10. Díaz Rojas PA, Sánchez Meca J. Meta-análisis del volumen nuclear de hepatocitos sometidos a diferentes condiciones de estrés. Correo Científico Médico de Holguín [Internet]. 2003 [citado 25 Jun 2011];7(3):[aprox. 4 p.] Disponible en: http://www.cocmed.sld.cu/no73/ n73ori8.htm

  11. Cornejo Uribe R. Análisis morfométrico del efecto de estimulaciones de láser infrarrojo sobre núcleos de hepatocitos de rata. Int J Morphol. 2010;28(3):771-5.

  12. Vertemati M, Moschenib C, Petrella D, Lamperti L, Cossa M, Gambacortac M, et al. Morphometric analysis of hepatocellular nodular lesions in HCV cirrhosis. Pathol Res Pract. 2012;208:240–4.

  13. Moreno Gomes E, da Silveira V, Ribeiro Filho J. Anatomía y fisiología hepática. Brasil: Atheneu; 2006.

  14. Santos M, Rogério AF, Monteiro A, Rocha E. A stereological study of the volume-weighted volume and of the relative volume of the nucleus of normal and preneoplastic hepatocytes in a trout model of hepatocarcinogenesis. Exp Tox Pathol. 2013;65:623–30.

  15. Cascales Angosto M. Señales que regulan la expresión de genes en la regeneración hepática. Madrid: Real Academia Nacional de Farmacia; 2009 [citado 25 Jun 2011]. Disponible en: http://www.analesranf.com/index.php/ mono/article/viewFile/819/789.

  16. Vizzotto L, Vertemati M, Degna CT, Aseni P. Liver transplantation in man: morphometric analysis of the parenchymal alterations following cold ischaemia and warm ischaemia/reperfusion. J Anat. 2001 May;198(Pt 5):603-10.

  17. Hoyos SI. Regeneración hepática posterior al trasplante. Rev Colomb Cir. 2008;23(3):156-61.




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