medigraphic.com
ISSN 1027-2852 (Digital)
ISSN 0864-4551 (Impreso)

2014, Número 2

<< Anterior Siguiente >>

Biotecnol Apl 2014; 31 (2)


Modelación in vitro del comportamiento ambiental de cepas atenuadas de Vibrio cholerae O139

Ledón T, Hernández DD, Marrero K, Fando R

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 27
Paginas: 121-128
Archivo PDF: 388.85 Kb.


RESUMEN

El cólera es una enfermedad diarreica producida por la infección con la bacteria Vibrio cholerae de los serogrupos O1 y O139. Muchas de las investigaciones para el desarrollo de vacunas orales contra esta enfermedad se dedican a la producción de cepas vivas atenuadas. TLP01 y TLP05 son cepas atenuadas del serogrupo O139, que carecen de los genes del profago CTXφ; además, no producen la hemaglutinina proteasa, importante factor de la patogénesis; ni la fimbria hemaglutinina sensible a manosa, la cual pudiera ser importante en el comportamiento de las cepas vacunales en el ambiente. En este artículo se describe el posible comportamiento ambiental de estas cepas, a partir del estudio in vitro de sus propiedades para producir varios tipos de biopelículas, de adquirir el fenotipo rugoso y de resistir varias condiciones de estrés ambiental, como la presencia de hipoclorito de sodio, de detergentes o altas concentraciones salinas. Los resultados evidencian que las cepas TLP01 y TLP05 poseen características que limitan su supervivencia in vitro frente a distintas condiciones de estrés, con respecto a cepas controles y salvajes. En el entorno ambiental, estas características pudieran limitar su supervivencia y actuar como elementos de contención del agente biológico que se use como ingrediente farmacéutico activo del candidato vacunal.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Faruque SM, Chowdhury N, Kamruzza- man M, Ahmad QS, Faruque AS, Salam MA, et al. Reemergence of epidemic Vibrio cholerae O139, Bangladesh. Emerg Infect Dis. 2003;9(9):1116-22.

  2. Bishop AL, Camilli A. Vibrio cholerae: lessons for mucosal vaccine design. Expert Rev Vaccines. 2011;10(1):79-94.

  3. Lopez AL, Clemens JD, Deen J, Jodar L. Cholera vaccines for the developing world. Hum Vaccin. 2008;4(2):165-9.

  4. Waldor MK, Mekalanos JJ. Lysogenic conversion by a filamentous phage encoding cholera toxin. Science. 1996;272(5270): 1910-4.

  5. Campos J, Martinez E, Marrero K, Silva Y, Rodriguez BL, Suzarte E, et al. Novel type of specialized transduction for CTX phi or its satellite phage RS1 mediated by filamentous phage VGJ phi in Vibrio chole-rae. J Bacteriol. 2003;185(24):7231-40.

  6. Campos J, Martinez E, Izquierdo Y, Fando R. VEJphi, a novel filamentous phage of Vibrio cholerae able to transduce the cholera toxin genes. Microbiology. 2010; 156(Pt 1):108-15.

  7. Das B, Bischerour J, Barre FX. Molecular mechanism of acquisition of the cholera toxin genes. Indian J Med Res. 2011;133: 195-200.

  8. Ledon T, Ferran B, Perez C, Suzarte E, Vichi J, Marrero K, et al. TLP01, an mshA mutant of Vibrio cholerae O139 as vaccine candidate against cholera. Microbes Infect. 2012;14(11):968-78.

  9. Lipp EK, Huq A, Colwell RR. Effects of global climate on infectious disease: the cholera model. Clin Microbiol Rev. 2002; 15(4):757-70.

  10. Huq A, Sack RB, Nizam A, Longini IM, Nair GB, Ali A, et al. Critical factors influencing the occurrence of Vibrio cholerae in the environment of Bangladesh. Appl Environ Microbiol. 2005;71(8):4645-54.

  11. Kamruzzaman M, Udden SM, Cameron DE, Calderwood SB, Nair GB, Mekalanos JJ, et al. Quorum-regulated biofilms enhance the development of conditionally viable, environmental Vibrio cholerae. Proc Natl Acad Sci USA. 2010;107(4):1588-93.

  12. Chiavelli DA, Marsh JW, Taylor RK. The mannose-sensitive hemagglutinin of Vibrio cholerae promotes adherence to zooplankton. Appl Environ Microbiol. 2001;67(7):3220-5.

  13. Reidl J, Klose KE. Vibrio cholerae and cholera: out of the water and into the host. FEMS Microbiol Rev. 2002;26(2):125-39.

  14. Watnick PI, Kolter R. Steps in the development of a Vibrio cholerae El Tor biofilm. Mol Microbiol. 1999;34(3):586-95.

  15. Watnick PI, Lauriano CM, Klose KE, Croal L, Kolter R. The absence of a flagellum leads to altered colony morphology, biofilm development and virulence in Vibrio cholerae O139. Mol Microbiol. 2001;39(2):223-35.

  16. Yildiz FH, Schoolnik GK. Vibrio cholerae O1 El Tor: identification of a gene cluster required for the rugose colony type, exopolysaccharide production, chlorine resistance, and biofilm formation. Proc Natl Acad Sci USA. 1999;96(7):4028-33.

  17. Kierek K, Watnick PI. The Vibrio cholerae O139 O-antigen polysaccharide is essential for Ca2+-dependent biofilm development in sea water. Proc Natl Acad Sci USA. 2003;100(24):14357-62.

  18. Yildiz FH, Dolganov NA, Schoolnik GK. VpsR, a member of the response regulators of the two-component regulatory systems, is required for expression of vps biosynthesis genes and EPS(ETr)-associated phenotypes in Vibrio cholerae O1 El Tor. J Bacteriol. 2001;183(5):1716-26.

  19. Wai SN, Mizunoe Y, Takade A, Kawabata SI, Yoshida SI. Vibrio cholerae O1 strain TSI-4 produces the exopolysaccharide materials that determine colony morphology, stress resistance, and biofilm formation. Appl Environ Microbiol. 1998; 64(10):3648-55.

  20. Provenzano D, Klose KE. Altered expression of the ToxR-regulated porins OmpU and OmpT diminishes Vibrio cholerae bile resistance, virulence factor expression, and intestinal colonization. Proc Natl Acad Sci USA. 2000;97(18):10220-4.

  21. Van Boekel MAJS. On the use of the Weibull model to describe thermal inactivation of microbial vegetative cells. J Food Microbiol. 2002;74(1-2):139-59.

  22. Lizarraga-Partida ML, Méndez-Gómez E, Rivas-Montano AM, Vargas-Hernández E, Portillo-López A, González-Ramírez AR, et al. Association of Vibrio cholerae with plankton in coastal areas of Mexico. Environ Microbiol. 2009;11(1):201-8.

  23. Sperandio V, Bailey C, Giron JA, DiRita VJ, Silveira WD, Vettore AL, et al. Cloning and characterization of the gene encoding the OmpU outer membrane protein of Vibrio cholerae. Infect Immun. 1996;64(12): 5406-9.

  24. Provenzano D, Lauriano CM, Klose KE. Characterization of the role of the ToxR-modulated outer membrane porins OmpU and OmpT in Vibrio cholerae virulence. J Bacteriol. 2001;183(12):3652-62.

  25. Bina XR, Provenzano D, Nguyen N, Bina JE. Vibrio cholerae RND family efflux systems are required for antimicrobial resistance, optimal virulence factor production, and colonization of the infant mouse small intestine. Infect Immun. 2008;76(8): 3595-605.

  26. Ledón T, Ferran B, Fando R. Estudio de la funcionalidad de ToxR en cepas atenuadas de Vibrio cholerae O139. Rev CENIC Cienc Biol. 2011;42(1):25-28.

  27. Castaneda Chavez Mdel R, Pardio Sedas V, Orrantia Borunda E, Lango Reynoso F. Influence of water temperature and salinity on seasonal occurrences of Vibrio cholerae and enteric bacteria in oyster-producing areas of Veracruz, Mexico. Mar Pollut Bull. 2005;50(12):1641-8.




2020     |     www.medigraphic.com