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ISSN 1029-3043 (Digital)

2014, Número 2

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Medicentro 2014; 18 (2)


Efecto antioxidante de la Chuquiraga jussieui J. F. Gmel en el ensayo de hemólisis

Dueñas RAA, Alcívar CUE, Olazábal ME, Cortés RR

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 14
Paginas: 57-64
Archivo PDF: 235.51 Kb.


RESUMEN

Se realizó la evaluación del efecto hemolítico y antioxidante del extracto acuoso de la Chuquiraga jussieui utilizando el ensayo de hemólisis del eritrocito humano producido por el dodecilsulfato de sodio. Se evaluaron cinco concentraciones del extracto (7,5, 15, 30, 60 y 120 mg/L). Se validó el efecto hemolítico producido por el dodecilsulfato en una solución que contiene eritrocitos, dodecilsulfato de sodio y solución amortiguadora fosfato salino; se obtuvo la concentración de hemoglobina en la suspensión utilizando espectroscopia ultravioleta visible, y se determinó el efecto antioxidante del extracto de Chuquiraga jussieui. Se obtuvo una concentración de hemoglobina media (CH50) del dodecilsulfato de sodio de 35,35 mg/L; mientras que para el extracto de Chuquiraga jussieui, la CI50 fue de 64,89 mg/L y la CI90 fue de 86,96 mg/L. Estos resultados sugieren la posible utilización del extracto de esta planta como antioxidante.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Dubey NK, Kumar R, Tripathi P. Global promotion of herbal medicine: India's opportunity. Curr Sci [internet]. 2004 [citado 12 ago. 2013];81:[aprox. 5 p.]. Disponible en: http://www.cccindia.co/corecentre/Database/Docs/DocFiles/herbal_medicine.pdf

  2. Firuzi O, Miri R, Asadollahi M, Eslami S, Jassbi AR. Cytotoxic, antioxidant and antimicrobial activities and phenolic contents of eleven salvia species from Iran. Iran. J Pharm Res [internet]. 2013 [citado 31 oct. 2013];12(4):[aprox. 10 p.]. Disponible en: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3920696/

  3. Chan CH, Ngoh GC, Yusoff R. A brief review on anti diabetic plants: Global distribution, active ingredients, extraction techniques and acting mechanisms. Pharmacogn Rev [internet]. 2012 [citado 8 ene. 2013];6(11):[aprox. 7 p.]. Disponible en: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3358964/

  4. Casado R, Landa, A. Anti-inflammatory, antioxidant and antifungal activity of Chuquiraga spinosa. Pharm Biol [internet]. 2011 [citado 12 ago. 2013]; 49(6):[aprox. 7 p.]. Disponible en: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Antiinflammatory% 2C+antioxidant+and+antifungaL+activity+of+Chuquiraga+spinosa

  5. Mendiondo ME, Juareza BE. Bioactivities of Chuquiraga straminea sandwith. Nat Prod Commun [internet]. 2011 [citado 2 sep. 2013];6(7):[aprox. 4 p.]. Disponible en: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Bioactivities+of+Chuquiraga+straminea+sandwith

  6. Alberto MR, Zampini IC, Isla MI. Inhibition of cyclooxygenase activity by standardized hydroalcoholic extracts of four Asteraceae species from the Argentine Puna. Braz J Med Biol Res [internet]. 2009 Sep. [citado 12 ago. 2013]; 42(9):[aprox. 4 p.]. Disponible en: http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0100- 879X2009000900003&lng=en&nrm=iso&tlng=en

  7. Hirschler-Laszkiewicz I, Zhang W, Keefer K, Conrad K, Tong Q, Shu-jen C, et al. Trpc2 depletion protects RBC from Oxidative Stress Induced Hemolysis. Exp Hematol [internet]. 2012 [citado 6 mar. 2013];40(1):[aprox. 13 p.]. Disponible en:http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3237850/

  8. Vitturi DA, Chiao-Wang S, Harper VM, Thrash-Williams B, Cantu-Medellin N, Chacko BK, et al. Antioxidant functions of the hemoglobin β93 cysteine residues in erythrocytes and the vascular compartment in vivo. Free Radic Biol Med [internet]. 2012 Nov. 16 [citado 31 ene. 2013];55:[aprox. 10 p.]. Disponible en: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3821075/

  9. Mahejabeen F, Kumar Kesharwani R, Misra K, Syed IR. Protective effect of the aflavin on erythrocytes subjected to in vitro oxidative stress. Biochem Res Int [internet]. 2013 Dec. 21 [citado 3 ene. 2014];(2013):[aprox. 8 p.]. Disponible en: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3880739/

  10. Sachar S, Saxena RK. Cytotoxic effect of poly-dispersed single walled carbon nanotubes on erythrocytes in vitro and in vivo. PLoS One [internet]. 2011 Jul. 19 [citado 20 abr. 2013];6(7):[aprox. 9 p.]. Disponible en: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3139600/

  11. Okoko T, Ere D. Reduction of hydrogen peroxide-induced erythrocyte damage by Carica papaya leaf extract. Asian Pac J Trop Biomed [internet]. 2012 Jun. [citado 3 mar. 2013];2(6):[aprox. 5 p.]. Disponible en: http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2221169112600744

  12. Martinez V, Corsini E, Mitjans M, Pinazo A, Vinardell MP. Evaluation of eye and skin irritation of arginine-derivative surfactants using different in vitro endpoints as alternatives to the in vivo assays. Toxicol Lett [internet]. 2006 Jul. 15 [citado 10 abr. 2013];164(3):[aprox. 9 p.]. Disponible en:http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0378427406000142

  13. Lin SH, Guidotti G. Purification of membrane proteins. Methods in Enzimol [internet]. 2009 [citado 21 nov. 2013];463(35):[aprox. 11 p.]. Disponible en: http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0076687909630354

  14. Kanias T, Acker JP. Biopreservation of red blood cells- the struggle with hemoglobin oxidation. FEBS J [internet]. 2010 Jan. [citado 17 abr. 2013];277 (2):[aprox. 13 p.]. Disponible en: http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1742-4658.2009.07472.x/full




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