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2012, Número 4

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Vet Mex 2012; 43 (4)


Determinación, por PCR, de Salmonella Enteritidis FT 13 A y Salmonella Issatschenko en muestras de pollitos infectados experimentalmente

Monroy BI, Ledesma MN, Sánchez GFD, Ruiz FG, Urquiza BO

Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 45
Paginas: 257-271
Archivo PDF: 284.21 Kb.


RESUMEN

El objetivo del presente trabajo fue determinar por medio de esta prueba, la presencia de Salmonella Enteritidis FT-13A (SE) y de Salmonella Issatschenko (SI), en diferentes muestras de órganos de pollitos de 4 días de edad infectados experimentalmente. Se emplearon órganos congelados de pollitos de 4 días de edad inoculados experimentalmente con SE y SI, para extraer el ADN y realizar la PCR clásica y anidada. Se logró detectar SE y SI desde las 6 horas posinfección experimental (PIE), pero conforme pasó el tiempo PIE, los resultados positivos fueron inconsistentes, obteniendo resultados negativos hasta las 174 horas PIE. Se concluyó que la PCR es útil para detectar SE y SI en las primeras horas PIE. Se sugiere utilizar pre-enriquecimiento de las muestras, para facilitar la extracción de ADN y la detección de Salmonella por medio de la PCR.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. LIBBY SJ, HALSEY TA, ALTIER C, POTTER J, GYLES CL. Salmonella. In: GYLES CL, PRESCOTT FL, SONGER JG, THOEN CO, editors. Pathogenesis of Bacterial Infections in Animals. 3rt. ed. Ames, Iowa: Blackwell publishing, 2004.

  2. BOURDENCHE M, ROGGENTIN P, MIKOLEIT M, I. FIELDS P, BOCKEMÜHL J et al. Supplement 2003- 2007 (no. 47) to the Kauffmann-White-Le Minor scheme. Res Microbiol 2010;161: 26-29.

  3. RUIZ FG, CONSTANTINO CF, QUINTANA LJA, CEDILLO PC Y URQUIZA BO. Patogenia de Salmonella Enteritidis FT13a y Salmonella Enteritidis biovar Issatschenko en pollo de engorda. Vet Méx 2008; 39:145-160.

  4. URQUIZA BO. Salmonelosis Aviar. Los avicultores y su entorno 2008; 65: 90-97.

  5. Tauxe RV, Tormey MP, Mascola l, Haargett-beam, Blake pa. Salmonellosis out-breaks on transatlantic flights: foodborne illness on aircraft 1974-1984. Am J. Epidemiol 1987: 125; 150-157.

  6. AVIÑA GLT. Evaluación de la inocuidad, posible respuesta antigénica y transmisión ovárica de Salmonella Enteritidis variedad 17 F-4 en gallinas de postura libres de patógenos específicos (tesis de licenciatura). México DF: Universidad Nacional Autónoma de México, 2001.

  7. URQUIZA BO. Patogenicidad e inocuidad de Salmonella Enteritidis var.17f-4 en animales de laboratorio y deter- minación de proteínas con actividad enterotóxica (tesis de doctorado). México DF: Universidad Nacional Autónoma de México, 2001.

  8. MORRISON TK. Laboratorio clínico y pruebas de diagnóstico. 3ra ed. México DF: Manual Moderno, 1998.

  9. DIARIO OFICIAL DE LA Federación Norma Oficial Mexicana NOM-005-ZOO-1993. Campaña nacional contra la Salmonelosis Aviar. DOF. 1 de Septiembre de 1994.

  10. MORILLA AG, BAUTISTA GCR. Manual de inmunología. México DF: DIANA, 1986: 295-308.

  11. SODIKOF CH. Pruebas diagnósticas y de laboratorio en pequeños animales: Una guía para el diagnóstico de laboratorio. 3ra ed. México DF: Harcourt, 2002.

  12. THOMASON BM. Rapid detection of Salmonella microcolonies by fluorescent antibody. Appl Microbiol 1971; 22: 1064-1069.

  13. DUFFEY PS, KANI JC, LEE JO, HILL WJ, KOKKA R. Salmonella serogroup C2 and C3 identified by agglutination using an immunoglobulin G3 (Kappa) monoclonal antibody (32-1-E3) reactive with a somatic factor 8- like polysaccharide antigen. J Clin Microbiol 1992; 30: 3050-3057.

  14. PÉREZ MJA, VÁZQUEZ MJR, RODRÍGUEZ SMC, MIRANDA MRE, ROMO GAL, NADER GE. Procedimientos de laboratorio para bacteriología y micología veterinarias. México DF, 1989.

  15. PROPHET EB, MILLS B, ARRINGTON JB. Métodos Histotecnológicos. Instituto de Patología de Las Fuerzas Armadas de los Estados Unidos de América (ARP) e Instituto de Patología de las Fuerzas Armadas de los Estados Unidos de América (AFIP), 1995.

  16. CRUZ HFC, HENRY RM. Métodos diagnósticos en enfermedades infecciosas. En: Mas OJ, editor. Diagnóstico Molecular en Medicina. México D.F: Manual Moderno, 2004.

  17. OLIVEIRA SD, SANTOS LR, SCHUCH DMT, SILVA AB, SALLE CTP, CANAL CW. Detection and identification of salmonellas from poultry-related samples by PCR. Vet Microbiol 2002; 87: 25-35.

  18. WHYTE P, GILL K MC, COLLINS JD. GORMLEY E. The prevalence and PCR detection of Salmonella contamination in raw poultry. Vet Microbiol 2002; 89: 53-60.

  19. STONE GG, OBERST RD, HAYS MP, MCVEY S, CHENGAPPA MM. Detection of Salmonella serovars from clinical samples by enrichment broth cultivation- PCR procedure. J Clin Microbiol 1994: 32: 1742-1749.

  20. WAN J, KING K, CRAVEN H, MC AULEY C, TAN SE, COVENTRY MJ. Probelia trade mark PCR system for rapid detection Salmonella in milk powder and ricotta cheese. Lett Appl Microbiol 2000:30: 267-271.

  21. GONZÁLEZ FT, ROJAS HRA. Enfermedades transmitidas por alimentos y PCR: prevención y diagnóstico. Salud pública de México 2005: 47: 388-390.

  22. KONGMUANG U, LUK JMC, LINBERG AA. Comparison of three stool-processing methods for detection of Salmonella serogroups B,C2 and D by PCR. J Clin Microbiol 1994; 32: 3072-3074.

  23. WAY JS, JOSEPHSON KL, PILLAI SD, ABBASZADAGAN M, GESBA CP, PEPPER IL. Specific detection of Salmonella spp by multiplex polymerase chain reaction. Appl Environ Microbiol 1993; 39: 1473- 1479.

  24. ROSSEN LP, ORSKOV K, HOLMSTROM K, RASMUSSEN OF. Inhibition of PCR by components of food samples, microbial diagnostic assays and ADN-extraction solutions. Int J Food Microbiol 1992; 17: 37-45.

  25. WILDE J, EIDEN J, YOLKEN R. Removal of inhibitory substances from human fecal specimens for detection of group A rotavirus by reverse transcriptase and polymerase chain reaction. J Clin Microbiol 1990; 28: 1300-1307.

  26. ALVA PJ. Determinación de la concentración mínima detectable por medio de la reacción en cadena de la polimerasa, PCR de Salmonella Enteritidis en órganos y heces de aves infectadas experimentalmente (tesis de licenciatura). México DF: Universidad Nacional Autónoma de México, 2005.

  27. SALYERS AA, WHITT DD. Bacterial pathogenesis a molecular approach. 2ª ed. Washington DC: ASM Press 2002: 381-397.

  28. FIDELMA BE, JIA L, OCHMAN H, SELANDER RK. Comparative genetics of the inv-spa invasion gene complex of Salmonella Enterica. J Bacteriol 1997: 6: 1985-1991.

  29. ESPINAL MP, PRIETO SE, OTERO JV, MÁTTAR VS. Presencia del gen de invasividad invA en cepas de Salmonella spp aisladas de alimentos del caribe colombiano. Rev Cubana Salud Pública 2006; 32: 115- 120.

  30. RYCHLIK I, VAN KESTEREN I, CARDOVA L. Rapid detection of Salmonella in field samples by nested polymerase chain reaction. Lett Appl Microb 1999; 29: 269-277.

  31. SMITH RD. Veterinary clinical epidemiology. 3rd ed. Urbana, Illinois, USA: Taylor Francis, 2006:33-55.

  32. MYINT MS, JOHNSON YJ, TABLANTE NL, HECKERT RA. The effect of pre-enrichment protocol on the sensitivity and specificity of PCR for detection of naturally contaminated Salmonella in raw poultry compared to conventional culture. Food Microbiol 2006; 26: 599-604.

  33. ASENSI GF, REIS EMF, DEL AGUILA EM, RODRIGUEZ D DOS P, SILVIA JT, PASCHOALIN VMF. Detection of Escherichia coli and Salmonella in Chicken rinse carcasses. Bri Food J 2009; 6:517-527.

  34. SOUMET C, ERMEL G, SALVAT G, COLIN P. Detection of Salmonella spp in food products by polymerase chain reaction and hybridization assay in microplate format. Lett App Microbiol 1997; 24: 113-116.

  35. POPPE C, JOHNSON PR, FOSBERG MC, IRWIN JR. Salmonella Enteritidis and other Salmonella in laying hens and eggs from flocks with Salmonella in their environment. Can J Vet Res 1992; 56: 226-232.

  36. CHIU T, CHEN T, HWANG W, TSEN H. Sequencing of an internal transcribed spacer region of 16S-23S rRNA gene and designing of PCR primers for the detection of Salmonella spp in food. Inter J Food Microbiol 2005; 97: 259-265.

  37. DENG S, CHENG A, WANG M, CAO P. Gastrointestinal tract distribution of Salmonella Enteritidis in orally infected mice with a species-specific fluorescent quantitative polymerase chain reaction. World J Gasto 2007; 13: 6568-6574.

  38. TURNBULL PCB, SNOEYENBOS GH. Experimental salmonellosis in the chicken. 1 Fate and host response in alimentary canal, liver and spleen. Avian Dis 1974; 18: 153-177.

  39. POPPE C, MCFADDENKA, BROUWER AM, DEMCZUK W. Characterization of Salmonella Enteritidis strains. Can J Vet Res 1993; 57: 176-184.

  40. MONTENEGRO MA, MORELLI G, HELMUTH R. Heteroduplex analysis of Salmonella virulence plasmids and their prevalence in isolations of defined sources. Microb Pathog 1991; 11: 391-397.

  41. GULIC PA. Mini-review. Virulence plasmids of Salmonella Typhimurium and other Salmonella. Microb Pathog 1990; 8:3-11.

  42. POPPE C, CURTISS R III, GULIC PA, GYLES CL. Hybridization studies with a ADN probe derived from the virulence region of the 60 MDa plasmid of Salmonella Typhimurium. Can J Vet Res 1989; 53: 378-384.

  43. PÉREZ CM, SÁNCHEZ MM, HENAO S, CARDONA- CASTRO NM. Estandarización y evaluación de dos pruebas de reacción en cadena de la polimerasa para el diagnóstico de Salmonella enterica subespecia enterica en huevos. Arch Med Vet 2008; 40: 235-242.

  44. KINDE H, SHIVASPRASAD HL, DAFT BM, READ DH, ARDANS A et al. Pathologic and bacteriologic findings in 27-week-old commercial laying hens experimentally infected with Salmonella Enteritidis, phage type 4. Avian Dis 2000; 44:239-248.

  45. SCHRANK IS, MORES MAZ, COSTA JLA, FRAZZON APG, SONCINI R, SCHRANK A et. al. Influence of enrichment media and application of a PCR based method to detect Salmonella in poultry industry products and clinical samples. Vet Microbiol 2001; 82:45-35.




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