medigraphic.com
ISSN 1028-4796 (Impreso)

2012, Número 4

<< Anterior Siguiente >>

Rev Cubana Plant Med 2012; 17 (4)


Capacidad atrapadora de radicales libres de Passiflora mollissima (Kunth) L. H. Bailey (curuba)

Alberto RB, Zapata AK, Cortes CFB

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 31
Paginas: 408-419
Archivo PDF: 89.18 Kb.


RESUMEN

Introducción: en Colombia hay un gran número de especies exóticas sin explotación con potencial agroindustrial que constituyen una fuente futura de ingresos. El género Passiflora, el más grande de la familia Passifloraceae comprende cerca de 500 especies, ninguna se caracteriza por poseer un alto contenido de compuestos polifenólicos con propiedades antioxidantes; excepto Passiflora mollissima (Kunth) L.H. Bailey (curuba) que es una fruta con alta capacidad reductora.
Objetivos: determinar la capacidad que tienen los extractos acuosos de curuba, proveniente de la región de Antioquia, Colombia, para atrapar especies reactivas de oxígeno.
Métodos: los contenidos de fenoles, flavonoides y taninos se determinaron por métodos espectrofotométricos. Los ácidos fenólicos se establecieron por high-pressure liquid chromatography. La capacidad para atrapar radicales libres peroxilos por los métodos fluorescentes ORAC (oxygen radical absorbance capacity) hidrofílico y lipofílico. La capacidad para atrapar las especies reactivas de oxígeno total e hidroxilos, se realizó por métodos fluorescentes y los radicales superóxido por espectrofotometría.
Resultados: los extractos acuosos de curuba son ricos en polifenoles, especialmente en taninos, flavonoides y ácidos fenólicos. Además, poseen una alta capacidad para atrapar las diversas especies reactivas de oxígeno, especialmente el radical ROO•, con un valor ORAC igual a 108164,9 mmol de Trolox/100 g de pulpa seca, más alto que la mayoría de las frutas y verduras.
Conclusiones: el extracto acuoso de curuba tiene un alto potencial nutracéutico, debido al contenido de polifenoles, que inciden directamente en su capacidad para atrapar radicales especies reactivas de oxígeno.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Ceconi C, Boraso A, Cargnoni A, Ferrari R. Oxidative stress in cardiovascular disease: myth or fact? Arch BiochemBiophys. 2003;420(2):217-21.

  2. Pacheco-Palencia LA, Talcott ST, Safe S, Mertens-Talcott S. Absorption and biological activity of phytochemical-rich extracts from Açai (Euterpeoleracea Mart.) pulp and oil in vitro. J Agric Food Chem. 2008;56(10):3593-600.

  3. Del Pozo-Insfran D, Percival SS, Talcott ST. Açai (Euterpeoleracea Mart.) polyphenolics in their glycoside and aglycone forms induce apoptosis of HL-60 leukemia cells. J Agric Food Chem. 2006;54(4):1222-9.

  4. Ruxton C, Gardner E, Walker D. Can pure fruit and vegetable juices protect against cancer and cardiovascular disease too? A review of the evidence. International. J Food Sci Nut. 2006;57(3): 249-72.

  5. Kuskoski M, Asuero A, Troncoso A. Aplicación de diversos métodos químicos para determinar actividad antioxidante en pulpa de frutos. Ciência Tecnol Aliment. 2005;25 (4):726-32.

  6. Dhawan K, Dhawan S, Sharma A. 2004. Passiflora: a review update. J Ethnopharmacol. 2004;94(1):1-23.

  7. Bernal JA, Díaz CA. Tecnología para el cultivo de la curuba. Medellín, Colombia: Ed. Litomadrid; 2005. p. 133-54.

  8. Botero ML, Ricaurte S, Monsalve C, Rojano B. Capacidad reductora de 15 frutas tropicales. Scientia Tech. 2007;33(13):295-6.

  9. Contreras-Calderón J, Calderón-Jaimes L, Guerra-Hernández E, García-Villanova B. Antioxidant capacity, phenolic content and vitamin C in pulp, peel and seed from 24 exotic fruits from Colombia. Food Research International. 2010;44(7):2047-53.

  10. Rautenbach F, Venter I. Hydrophilic and lipophilic antioxidant capacity of commonly consumed South African fruits, vegetables, grains, legumes, fats/oils and beverages. J Food Composition Analysis. 2010;23(7):753-61.

  11. Naranjo M, Vélez T, Rojano B. Actividad antioxidante de café colombiano de diferentes calidades. Rev Cubana Plant Med. 2011;16(2):164-73.

  12. Debnath T, Park P, DebNath N, Samad NB, Park HW, Lim B O. Antioxidant activity of Gardenia jasminoides Ellis fruit extracts. Food Chemistry. 2011;128(3):697-703.

  13. Hagerman A, Butler LG. Choosing appropriate methods and standards for assaying tannin. J Chem Ecol. 1989;15(6):1795-810.

  14. Kelebek H, Serkan S, Ahmet C, Turgut C. HPLC determination of organic acids, sugars, phenolic compositions and antioxidant capacity of orange juice and orange wine made from a Turkish cv. Kosan. Microchemical J. 2009;91(2):187-92.

  15. Petyaev IM, Hunt JV. Micellar acceleration of oxygen-dependent reactions and its potential use in the study of human low density lipoprotein. Biochimica Biophysica Acta (BBA) - Lipids and Lipid Metabolism. 1997;1345(3):293-305.

  16. Barreca D, Bellocco E, Caristi C, Leuzzi U, Gattuso G. Flavonoid composition and antioxidant activity of juices from chinotto (Citrus myrtifolia Raf.) fruits at different ripening stages. J Agric Food Chem. 2010;58(5):3031-6.

  17. Martín-Romero FJ. Contribution of culture media to oxidative stress and its effect on human oocytes. Reproductive BioMedicine Online. 2008;17(5) 652-61.

  18. Yang XF, Guo XQ. Fe(II)EDTA chelate-induced aromatic hydroxylation of terephthalate as a new method for the evaluation of hydroxyl radical-scavenging ability The analyst. 2001;126(6):928-32.

  19. Bisby RH, Brooke R, Navaratnam S. Effect of antioxidant Oxidation potential in the oxygen radical absorption capacity (ORAC) assay. Food Chemistry. 2008;108(3):1002-7.

  20. Vasco C, Ruales J, Kamal-Eldin A. Total phenolic compounds and antioxidant capacities of major fruits from Ecuador. Food Chemistry. 2008;111(4):816-23.

  21. Gu L, Kelm M, Hammerstone JF, Beecher G, Cunningham D, Vannozzi S, et al. Fractionation of polymeric procyanidins from lowbush blueberry and quantification of procyanidins in selected foods with an optimized normal-phase HPLC-MS fluorescent detection method. J Agric Food Chem. 2002;50(17):4852-60.

  22. White BL, Howard LR, Prior RL. Proximate and polyphenolic characterization of cranberry pomace. J Agric Food Chem. 2010,58(7):4030-6.

  23. Middleton EJR, Kandaswami C, Theoharidesl T. The effects of plant flavonoids on mammalian cells: Implications for inflammation, heart disease and cancer. Pharmacological Reviews. 2000;52(4):673-51.

  24. Knekt P, Jarvinen R, Reunanen A, Maatela J. Flavonoid intake and coronary mortality in Finland: a cohort study. BMJ.1996;312(7029):478-81.

  25. Biglari F, AlKarkhi AFM, Easa AM. Antioxidant activity and phenolic content of various date palms (Phoenix dactylifera) fruits from Iran. Food Chem. 2008;107(4):1636-41.

  26. Biglari F, AlKarkhi AFM, Easa AM. Cluster analysis of antioxidant compounds in dates (Phoenix dactylifera): Effect of long-term cold storage. Food Chem. 2009;112(4):998-1001.

  27. Zulueta A, Esteve MJ, Frígola A. ORAC and TEAC assays comparison to measure the antioxidant capacity of food products. Food Chemistry. 2009;114(1):310-6.

  28. Wu X, Beecher G R, Holden JM, Haytowitz DB, Gebhardt SE, Prior RL. Lipophilic and hydrophilic antioxidant capacities of common foods in the United States. J Agric Food Chem. 2004;52(12):4026-37.

  29. Kang J, Li Z, Wu T, Jensen GS, Schauss AG, Wu X. Antioxidant capacities of flavonoid compounds isolated from acai pulp (Euterpeoleracea Mart.). Food Chemistry. 2010;122(3):610-7.

  30. Schinella G, Fantinelli JC,Tournier H, Prieto JM, Spegazzini E, Debenedetti S, Mosca SM. Antioxidant and cardioprotective effects of Ilex brasiliensis: A comparative study with Ilex paraguariensis (yerba mate). Food Research International. 2009;42(10):1403-9.

  31. Schinella G, Troiani G, Dávila V, de Buschiazzo PM, Tournier HA. Antioxidant effects of an aqueous extract of Ilex paraguariensis. Biochemical Biophysical Research Communications. 2000;269(2):357-60.




2020     |     www.medigraphic.com