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ISSN 1028-4796 (Impreso)

2012, Número 4

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Rev Cubana Plant Med 2012; 17 (4)


Determinación del potencial antioxidante en extractos de vinagre Guadua angustifolia Kunth para aplicaciones alimenticias

Arboleda EC, Jaramillo YF, Palacio TH

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 53
Paginas: 330-342
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RESUMEN

Introducción: los vinagres producidos durante la pirolisis de Guadua angustifolia Kunth, son una fuente de compuestos fenólicos con alta actividad antioxidante; en la literatura se reporta que se han logrado extraer cerca de 400 compuestos de interés de especies similares, con aplicación farmacéutica, cosmética y alimentaria. Debido a este potencial, la guadua representa una importante alternativa de desarrollo científico, tecnológico y económico.
Objetivos: identificar los compuestos fenólicos del vinagre de guadua, investigar su capacidad antioxidante y medir la eficiencia del proceso de refinación para incorporar el vinagre refinado en una formulación alimenticia.
Métodos: el vinagre se guadua se caracterizó por cromatografía de gases y luego se sometió a un proceso de destilación fraccionado y a un proceso enzimático para eliminar compuestos tóxicos. Posteriormente se usaron diferentes concentraciones de vinagre refinado y de maltodextrina para la elaboración de las diferentes formulaciones. La actividad antioxidante en las formulaciones se determinó por los métodos ABTS y DPPH, y la concentración de siringol se cuantificó por HPLC.
Resultados: los procesos de refinación lograron eliminar los compuestos tóxicos casi en su totalidad. Las formulaciones alimenticias preparadas sobre la base de vinagre de guadua presentan una actividad antioxidante hasta de 940,16 µmol/L. La concentración de siringol en las formulaciones oscila entre 20 y 100 ppm.
Conclusiones: se logró incorporar el vinagre de guadua en el desarrollo de una bebida alimenticia con propiedades antioxidantes. La actividad antioxidante resultó 10 veces mayor que las bebidas comerciales.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Sabater J, Sabater G, Arambarri AM. Farmacia Meritxell [sitio en internet]. [citado 20 May 2009]. Disponible en: http://www.farmaciameritxell.com/productes/Antiaging.pdf

  2. Venereo JR. Daño oxidativo, radicales libres y antioxidantes. Rev Cubana Med Milit. 2002;31(2):126-33.

  3. Martínez S, González J, Culebras JM, Tuñón MJ. Revisión. Los flavonoides: propiedades y acciones antioxidantes. Nutr Hosp. 2002;17(6):271-8.

  4. Boots A, Haenen G, Bast A. Health effects of quercetin: From antioxidant to nutraceutical. Eur J Pharmacol. 2008;585(2-3):325-37.

  5. Halliwell B, Gutteridge JM. Free radicals in biology and medicine. 4 ed. Londres: Oxford University Press; 2006.

  6. Georgetti SR, Casagrande R, Fernandez CR, Pereira W, Vieira MJ. Spray drying of the soybean extract: Effects on chemical properties and antioxidant activity. Science Direct. 2008;(41):1521-7.

  7. Bhanja T, Rout S, Banerjee R, Bhattacharyya BC. Studies on the performance of a new bioreactor for improving antioxidant potential of rice. Science Direct. 2008;(41):1459-65.

  8. Conde E, Cadahía E, García MC. HPLC Analysis of flavonoids and phenolic acids and aldehydes in Eucalyptus spp. Chromatographia. 1995;41(11/12):657-60.

  9. Harborne JB. The flavonoids, advances in research since 1986. Londres: Chapman & Hall; 1996. p. 619-20.

  10. Álvarez E, Orallo F. Actividad biológica de los flavonoides (I). Acción frente al cáncer. OFFARM. 2003;22(10):130-40.

  11. Chapman GP. The biology of grasses. Londres: CAB International; 1996.

  12. AbdLatif MWA, Wan T, Fauzidah A. Anatomical features and mechanical properties of three Malaysian bamboos. J Trop For Sci. 1990;2(3):227-34.

  13. Chapman GP. The bamboos. Serie 19. Londres: Linnean Society Symposium Series; 1997.

  14. Andy WCL, Gang Ch, Frank H. Tainter Comparative treatability of Moso bamboo and Southern pine with CCA preservative using a commercial schedule. Bioresource Technol. 2001;77(1):87-8.

  15. Wong KM. The bamboos of Peninsular Malaysia. 41a ed. Sabah: Malayan Forest Records; 1995.

  16. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural, República de Colombia. Talleres de presentación de avances de proyectos de I+D+I en las cadenas de guadua y forestal. Ministerio de Agricultura y Desarrollo rural [Sitio en Internet]. [Citado 20 Sep 2009]. Disponible en: http://sigp.minagricultura.gov.co/soporte/noticias /Boletin_Taller_Guadua_Forestal.pdf

  17. Chen Xuhe, Lou Yiping, Hao Ying (Editores). International Workshops on bamboo industrial utilization [Sitio en Internet]. [Citado 20 Sep 2009]. Disponible en: http://www.inbar.int/publication/txt/INBAR_PR_13.htm

  18. Yoshihiko A, Yuka T, Soota I, Miho T, Takeshi N. Volatile Organic compounds with characteristic odor in bamboo vinegar. Biosci Biotechnol Biochem. 2006;70(11):2797-9.

  19. Jun M, Tohru U, Takeshi F. Effect of bamboo vinegar on regulation of germination and radicle growth of seed plants. J Wood Sci. 2003;49(3):262-70.

  20. Jun M, Tohru U, Takeshi F. Effect of bamboo vinegar on regulation of germination and radicle growth of seed plants II: composition of moso bamboo vinegar at different collection temperature and its effects. J Wood Sci. 2004;50(5):470-6.

  21. Sulaiman RJ, Murphy RH, Sanchis CG. The inhibition of microbial growth by bamboo vinegar. J Bamboo Rattan. 2005;4(1):71-80.

  22. Mejía AI. Plantas del género bambusa: importancia y aplicaciones en la industria farmacéutica, cosmética y alimentaria. Vitae. 2009;16(3):396-405

  23. Reed M, Lieb A, Nijhout F. The biological significance of substrate inhibition: A mechanism with diverse functions. Bioessays. 2010;32:422-9.

  24. Pramparo L. Study of a torus bioreactor for the enzymatic elimination of phenol [Tesis Doctoral]. Tarragona: Universitat Rovira i Virgili; 2008.

  25. Eriksson KE, Blanchette RA, Ander P. Microbial and enzymatic degradation of wood and wood components. Berlin, Heidelberg, New York: Springer-Verlag; 1990. p. 397.

  26. Martínez AT, Camarero S, Guillen F, Gutierrez A, Munoz C, Varela E. Progress in biopulping of non-woody materials: chemical, enzymatic and ultrastructural aspects of wheat straw delignification whit ligninolytic fungi from de genus Pleurotus. Fems Microbiol Rev. 1994;13:265-73.

  27. Russell R, Paterson M. Ganoderma -A terapeutical fungal biofactory. Phytochemistry. 2006;67:1985-2001.

  28. Fujita R, Liu J, Shimizu K, Konishi F, Noda K, Kumamoto S, et al. Anti-androgenic activities of Ganoderma lucidum. J Ethnopharmacol. 2005;102:107-12.

  29. Horng-Huey Ko, Hung C. Antiinflammatory triterpenoids and steroids from Ganoderma lucidum and G. tsugae. Phytochemistry. 2008;69:234-9.

  30. Seong-Kug Eo, Young-So Kim. Antiviral activities of various water and methanol soluble substances isolated from Ganoderma lucidum. J Ethnopharmacol. 1999;68:129-36.

  31. Maganhotto CM, Soares DM, Oliveira PR. Ligninolytic enzyme production by Ganoderma spp. Enzyme Microbial Technol. 2005;37:324-9.

  32. Mau JL, Lin HC, Chin-Chu-Chen. Antioxidant properties of several medicinal mushrooms. J Agric Food Chem. 2002;50(21):6072-7.

  33. Mau JL, Lin HC, Chin-Chu-Chen. Antioxidant properties of several specialty mushrooms. Food Research International. 2002;35:519-26.

  34. Mau JL, Tsai SY, Tseng Y, Huang S. Antioxidant properties of methanolic extracts from Ganoderma tsugae. Food chemistry. 2005;93:641-9.

  35. Arboleda C, Mejia AI, Franco AE, Jimez GA, Penninckx MJ. Autochthonous white rot fungi from the tropical forest of Colombia for dye decolorisation and ligninolytic enzymes production. Sydowia 2008;60(2):165-80.

  36. Murugesan K, Kim YM, Jeon JR, Yoon-Seok Chang YS, Effect of metal ions on reactive dye decolorization by laccase from Ganoderma lucidum. Journal of Hazardous Materials. 2009;168(1):523-9.

  37. Mester T, Peña M, Field JA. Nutrient regulation of extracellular peroxidases in the white-rot fungus Bjerkandera sp. BOS55. Applied Microbiol biotechnol. 1995;44:778-84.

  38. Fang QH, Zhong JJ. Submerged fermentation oh higher fungus Ganoderma lucidum for production of valuable bioactive metabolites-Ganoderic acid and polysaccharide. Biochemical Engineering J. 2002;10:61-5.

  39. Tang YJ, Zhong JJ. Fed-batch fermentation of Ganoderma lucidum for hyperproduction of polysaccharide and ganoderic acid. Enzyme Microbial Technol. 2002;31:20-8

  40. Hinkelmann K, Jo J. Linear trend-free Box-Behnken designs. J Statical Planning Interference. 1998;72(1-2):347-54.

  41. Paszczynski A, Huynh VB, Crawford R. Comparison of ligninase-1 and peroxidase-m2 from de white-rot fungus Phanerocheate chrysosporium. Arch Biochem biophysics. 1986;244(2):750-65.

  42. Waterman, Mole S. Analysis of phenolic plant metabolites. Oxford: Blackwell Scientific Publications; 1994.

  43. Singleton VL, Rossi JA. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. Am J Enol Vitic. 1965;16(3):144-58

  44. Cavin A, Hostettmann K, Dyatmyko W, Potterat O. Antioxidant and lipophilic constituents of Tinospora crispa. Planta Med. 1998;64:393-6.

  45. Re R, Pellegrini R, Proteggente A, Pannala A, Yang M, Rice-Evans C. Antioxidant applying an improved ABTS radical cathion decolorization assay. Free Radical Biology Medicine. 1999;26(9-10):1231-7.

  46. Baldrian P. Interaction of heavy metals with White-Rot fungis. Enzyme Microbiol Technol. 2003;32:78-91.

  47. Wen Tang W, Liu JW, Zhao WM, Wei DZ, Zhong JJ. Ganoderic acid T from Ganoderma lucidum mycelia induces mitochondria-mediated apoptosis in lung cancer cells. Life Sciences. 2006;80:205-11.

  48. Chen YG, Shen ZJ, Chen XP. Modulatory effect of Ganoderma lucidum polysaccharides on serum antioxidant enzymes activities in ovarian cancer rats. Carbohydrate Polymers. 2009;78:258-62

  49. Chen XP, Chen Y, Li SB, Chen YG, Lan JY, Liu LP. Free radical scavenging of Ganoderma lucidum polysaccharides and its effect on antioxidant enzymes and immunity activities in cervical carcinoma rats. Carbohydrate Polymers. 2009;77:389-93.

  50. Lakshmi B, Ajith TA, Janardhanan KK. Antimutagenic activity of methanolic extract of Ganoderma lucidum and its effect on hepatic damage caused by benzo[a]pyrene. J Ethnopharmacol. 2006;107:297-303.

  51. Saltarelli R, Ceccaroli P, Lotti M, Zambonelli A, Buffalini M, Casadei L, et al. Biochemical characterisation and antioxidant activity of mycelium of Ganoderma lucidum from Central Italy. Food Chemistry. 2009;116:143-51.

  52. Gazak R, Sedmera P, Marzorati M, Riva S, Køen V. Laccase-mediated dimerization of the flavonolignan silybin. J Molecular Catalysis B: Enzymatic. 2008;50:87-92.

  53. Wang S. Pharmaceutical composition containing guaiacol derivatives and syringol derivatives extracted from natural plant vinegar [Patente US 2007/0065524 A1]. United States; 2007.




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