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ISSN 1028-4796 (Impreso)

2011, Número 2

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Rev Cubana Plant Med 2011; 16 (2)


Valoración del potencial antioxidante de Mollinedia racemosa (romadizo)

Solanilla DJF, Lombo O, Murillo PE, Méndez AJJ

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 44
Paginas: 151-163
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RESUMEN

Introducción: Mollinedia racemosa (Schltdl.) Tul. (romadizo), es una especie usada por grupos indígenas y comunidades campesinas de la cuenca del Orinoco colombiano, empleada para tratar fiebres, dolores de cabeza y problemas de estómago, especialmente en el tratamiento del resfriado y como analgésico.
Objetivo: evaluar el potencial antioxidante de las hojas de M. racemosa (romadizo).
Métodos: se preparó un macerado etanólico de hojas (relación 1:15, vegetal/solvente), renovando el solvente cada 24 h hasta agotar la muestra. El extracto se filtró, se concentró a presión reducida y se almacenó (4 ºC). Se valoró el contenido de compuestos fenólicos, flavonoides y de flavonoles totales. Se estableció además la concentración de alcaloides que posee la planta. Asimismo, se evaluó la actividad antioxidante in vitro del vegetal midiendo la capacidad del extracto etanólico para estabilizar radicales DPPH (1,1-difenil-2-picrilhidracil) y ABTS (ácido 2,2'azinobis-[3 etilbenzotiazolina]-6-sulfónico), y la potencialidad para inhibir la peroxidación de un sistema lipídico.
Resultados: el potencial antioxidante de M. racemosa mostró dependencia de la concentración aplicada, que a su vez está correlacionada con la diversidad y cantidad de constituyentes de naturaleza fenólica del vegetal. Concentraciones de 14,59 mg/mL y 17,32 mg/mL se requieren para inhibir 50 % de la cantidad original utilizada de DPPH y ABTS, respectivamente. La actividad inhibitoria de la peroxidación lipídica alcanzó su máxima capacidad a las 360 h (15 d).
Conclusiones: los resultados obtenidos permiten concluir que el extracto hidroalcohólico de las hojas de M. racemosa posee un efecto antioxidante y protector de un sistema lipídico.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Li H-B, Wong C-C, Cheng K-W, Chen F. Antioxidant properties in vitro and total phenolic contents in methanol extracts from medicinal plants. LWT - Food Science Technology. 2008;41(3):385-90.

  2. Sultana B, Anwar F, Asi MR, Chatha SAS. Antioxidant potential of extracts from different agro wastes: Stabilization of corn oil. Grasas y Aceites. 2008;59:205-17.

  3. Finkel T, Holbrook NJ. Oxidants, oxidative stress and the biology of ageing. Nature. 2000;408(6809):239-47.

  4. Eberhardt MV, Lee CY, Liu RH. Nutrition: Antioxidant activity of fresh apples. Nature. 2000;405(6789):903-4.

  5. La Vecchia C, Altieri A, Tavani A. Vegetables, fruit, antioxidants and cancer: a review of Italian studies. European J Nutrition. 2001;40(6):261-7.

  6. Iqbal S, Bhanger MI, Anwar F. Antioxidant properties and components of bran extracts from selected wheat varieties commercially available in Pakistan. LWT - Food Science Technology. 2007;40(2):361-7.

  7. Li H-B, Cheng K-W, Wong C-C, Fan K-W, Chen F, Jiang Y. Evaluation of antioxidant capacity and total phenolic content of different fractions of selected microalgae. Food Chemistry. 2007;102(3):771-6.

  8. Lombo O, Murillo E, Mendez JJJ. Química y funcionalidad biológica de romadizo (Mollinedia sp.), un recurso de valor etnomédico en la Orinoquía colombiana. Universidad de Salermo. XVIII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina. Cuba: Sociedad Cubana de Química; 2009. p. 170-1.

  9. De Marcano D, Hasegawa M. Fitoquímica Orgánica. Caracas, Venezuela: Consejo de Desarrollo Científico y Humanístico;1991.

  10. García DE, Medina MG, Domínguez C, Baldizán A, Humbría J, Cova L. Evaluación química de especies no leguminosas con potencial forrajero en el estado Trujillo, Venezuela. Zootecnia Tropical. 2006;24:401-15.

  11. Galindo WF, Rosales M, Murgueitio E, Larrahondo JE. Sustancias antinutricionales en las hojas de guamo, nacedero y matarratón. Livestock Research Rural Development; 1989.

  12. Ibarra MdJ, Cantú PC, Verde MJ, Oranday A. Caracterización fitoquímica y efecto hipoglucemiante de Tecoma stans y su relación con la presencia del cromo como factor de tolerancia a la glucosa. Información Tecnológica. 2009;20:55-64.

  13. Makkar HPS, Becker K, Sidhuraju P. Plant Secondary Metabolites. Totowa, New Jersey: Ed. Humana Press; 2007.

  14. Lastra H, Rodríguez E, Ponce de León H, González ML. Método analítico para la cuantificación de taninos en el extracto acuoso de romerillo. Rev Cubana Plant Med. 2000;5:17-22.

  15. Isaza JH, Veloza LÁ, Guevara CA, Ramírez LS. Estimación espectrofotométrica de taninos hidrolizables y condensados en plantas Melastomatáceas. Scientia et Technica. 2007;33:261-6.

  16. Hagerman AE, Butler LG. Protein precipitation method for the quantitative determination of tannins. J Agricultural Food Chemistry. 1978;26(4):809-12.

  17. Naczk M, Amarowicz R, Zadernowski R, Shahidi F. Protein precipitating capacity of condensed tannins of beach pea, canola hulls, evening primrose and faba bean. Food Chemistry. 2001;73(4):467-71.

  18. Schoeneberger H, Gross R, Cremer HD, Elmadfa I. Composition and protein quality of Lupinus mutabilis. J Nutrition. 1982;112(1):70-6.

  19. Hatzold T, Elmadfa I, Gross R, Wink M, Hartmann T, Witte L. Quinolizidine alkaloids in seeds of Lupinus mutabilis. J Agricultural Food Chemistry. 1983;31(5):934-8.

  20. Sultana B, Anwar F, Przybylski R. Antioxidant activity of phenolic components present in barks of Azadirachta indica, Terminalia arjuna, Acacia nilotica, and Eugenia jambolana Lam. trees. Food Chemistry. 2007;104(3):1106-14.

  21. Prado ACPd, Aragão AM, Fett R, Block JM. Antioxidant properties of pecan nut (Carya illinoinensis [Wangenh.] C. Koch) Shell Infusion. Grasas y Aceites. 2009;60:330-5.

  22. Arnao MB. Some methodological problems in the determination of antioxidant activity using chromogen radicals: a practical case. Trends Food Science Technology. 2000;11(11):419-21.

  23. Arnao MB, Cano A, Acosta M. The hydrophilic and lipophilic contribution to total antioxidant activity. Food Chemistry. 2001;73(2):239-44.

  24. Iqbal S, Bhanger MI, Anwar F. Antioxidant properties and components of some commercially available varieties of rice bran in Pakistan. Food Chemistry. 2005;93(2):265-72.

  25. Leitão GG, Simas NK, Soares SSV, de Brito APP, Claros BMG, Brito TBM, et al. Chemistry and pharmacology of Monimiaceae: a special focus on Siparuna and Mollinedia. J Ethnopharmacol. 1999;65(2):87-102.

  26. Langley-Evans SC. Antioxidant potential of green and black tea determined using the ferric reducing power (FRAP) assay. International J Food Sciences Nutrition. 2000;51:181-8.

  27. Liu RH. Health benefits of fruit and vegetables are from additive and synergistic combinations of phytochemicals. American J Clinical Nutrition. 2003;78(3):517-20.

  28. She G-M, Xu C, Liu B, Shi R-B. Polyphenolic acids from mint (the Aerial of Mentha haplocalyx Briq.) with DPPH radical scavenging activity. J Food Science. 2010;75(4):C359-C62.

  29. Terpinc P, Abramovic H. A kinetic approach for evaluation of the antioxidant activity of selected phenolic acids. Food Chemistry. 2010;121(2):366-71.

  30. Borneo R, León AE, Aguirre A, Ribotta P, Cantero JJ. Antioxidant capacity of medicinal plants from the Province of Córdoba (Argentina) and their in vitro testing in a model food system. Food Chemistry. 2009;112(3):664-70.

  31. Sánchez-Moreno C, Larrauri J, Saura-Calixto F. Free radical scavenging capacity and inhibition of lipid oxidation of wines, grape juices and related polyphenolic constituents. Food Research International. 1999;32(6):407-12.

  32. Amarowicz R, Pegg RB, Rahimi-Moghaddam P, Barl B, Weil JA. Free-radical scavenging capacity and antioxidant activity of selected plant species from the Canadian prairies. Food Chemistry. 2004;84(4):551-62.

  33. Wang K-J, Zhang Y-J, Yang C-R. New phenolic constituents from Balanophora polyandra with radical-scavenging activity. Chemistry Biodiversity. 2006;3(12):1317-24.

  34. Brand-Williams W, Cuvelier ME, Berset C. Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. LWT - Food Science Technology. 1995;28(1):25-30.

  35. Ramírez-Anguiano AC, Santoyo S, Reglero G, Soler-Rivas C. Radical scavenging activities, endogenous oxidative enzymes and total phenols in edible mushrooms commonly consumed in Europe. J Science Food Agriculture. 2007;87(12):2272-8.

  36. Tung Y-T, Wu J-H, Kuo Y-H, Chang S-T. Antioxidant activities of natural phenolic compounds from Acacia confusa bark. Bioresource Technology. 2007;98(5):1120-3.

  37. Karadeniz F, Burdurlu HS, Koca N, Soyer Y. Antioxidant activity of selected fruits and vegetables grown in Turkey. Turkish J Agriculture Forestry. 2005;29:297-303.

  38. Harborne JB. Phytochemical methods: a guide to modern techniques of plant analysis. New York: Springer; 1998.

  39. Pourmorad F, Hosseinimehr SJ, Shahabimajd N. Antioxidant activity, phenol and flavonoid contents of some selected Iranian medicinal plants. African J Biotechnology. 2006;5:1142-5.

  40. Kumar PS, Sucheta S, Deepa VS, Selvamani P, Latha S. Antioxidant activity in some selected Indian medicinal plants. African J Biotechnology. 2008;7:1826-8.

  41. Macko E, Weisbach JA, Douglas B. Some observations on the pharmacology of mitragynine. Archives Internationales Pharmacodynamie Thérapie. 1972;198(1):145.

  42. Takayama H. Chemistry and pharmacology of analgesic indole alkaloids from the rubiaceous plant, Mitragyna speciosa. Chemical Pharmaceutical Bulletin. 2004;52(8):916-28.

  43. Sundararajan R, Haja NA, Venkatesan K, Mukherjee K, Saha BP, Bandyopadhyay A, et al. Cytisus scoparius link- A natural antioxidant. BMC Complementary Alternative Medicine. 2006;6:8.

  44. Moyo M, Ndhlala AR, Finnie JF, Van Staden J. Phenolic composition, antioxidant and acetylcholinesterase inhibitory activities of Sclerocarya birrea and Harpephyllum caffrum (Anacardiaceae) extracts. Food Chemistry. 2010;123(1):69-76.




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