2012, Número 3
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Rev Cubana Plant Med 2012; 17 (3)
Estabilidad de antocianinas y valores de capacidad de absorbancia de radicales oxígeno (ORAC) de extractos acuosos de corozo (Bactris guineensis)
Rojano B, Cristina ZI, Bernardo CF
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 24
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RESUMEN
Introducción: los extractos acuosos de corozo (Bactris guineensis [L.] H. E. Moore) son ricos en antocianinas y en el Caribe colombiano son sometidos a ebullición por largos períodos; esta infusión es consumida como una bebida refrescante. Sin embargo, no se conoce la estabilidad de estos metabolitos secundarios durante la cocción.
Objetivos: evaluar la estabilidad de las antocianinas de corozo a diferentes temperaturas y su efecto sobre los valores de capacidad de absorbancia de radicales oxígeno (ORAC); además cómo se afectan las antocianinas por disminución de las condiciones acídicas. El extracto de corozo con mejores características nutracéuticas fue caracterizado por otras propiedades, que afectan los valores ORAC.
Métodos: se evaluaron las propiedades antioxidantes usando técnicas fluorescencentes (ORAC), los componentes polifenólicos de los extractos acuosos de corozo cultivado en Colombia fueron determinados por cromatografía líquida de alta resolución. Los fenoles y las antocianinas totales, se determinaron por los métodos Folin Ciocalteu y diferencial de pH, respectivamente; y los minerales por absorción atómica.
Resultados: los valores ORAC se correlacionan exponencialmente con la temperatura, por tanto, Valores ORAC= e(4,75249 + 0,0578627.T°C), donde e es la base natural del logaritmo, T°C es la temperatura en grados centígrados. El contenido de fenoles afecta la actividad antioxidante, así: Valores ORAC= - 25965,6 + 6920,3.Ln (fenoles totales). Las mejores características nutracéuticas: fenoles totales (1 113,8), antocianinas totales (148,6) y valores ORAC (23 039,0), se alcanzaron en las infusiones realizadas a una temperatura de 101 °C.
Conclusiones: las estructuras de las antocianinas del corozo extraídas a temperaturas entre 40 y 101 °C son poco afectadas, y la acidificación con HCl 2N las hidroliza poco. Los extractos acuosos de corozo obtenidos a 101 °C, tienen actividad antioxidante similar o superior a la mayoría de las cerezas.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Galeano G, Bernal R. Palmas de Colombia. Santafé de Bogotá, Colombia: Panamericana Formas e impreso S.A.; 2010. p. 429-31.
De Oliveira MKS, Martínez-Flores HE, De Andrade JS, Garnica-Romo MG, Chang YK. Use of pejibaye flour (Bactris gasipaes Kunth) in the production of food pastas. International. J Food Science Technol. 2006;41:933-7.
Osorio C, Acevedo B, Hillebrand S, Carriazo J, Winterhalter P, Morales AL. Microencapsulation by spray-drying of anthocyanin pigments from Corozo (Bactris guineensis) fruit. J Agric Food Chem. 2010;58(11):6977-85.
Del Pozo-Insfran D, Percival SS, Talcott ST. Açai (Euterpe oleracea Mart.) polyphenolics in their glycoside and aglycone forms induces apoptosis of HL-60 leukemia cells. J Agric Food Chem. 2006;54(4):1222-9.
Pacheco-Palencia LA, Talcott ST, Safe S, Mertens-Talcott S. Absorption and biological activity of phytochemical-rich extracts from Açai (Euterpe oleracea Mart.) pulp and oil in vitro. J Agric Food Chem. 2008;56(10):3593-600.
Polo-Insfran DD, Brenes CH, Talcott ST. Phytochemical composition and pigment stability of açai (Euterpe oleraceae Mart.). J Agric Food Chem. 2004;52:1539-45.
Singleton VL, Rossi JA. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdicphosphotungstic acid reagents. American J Enology Viticulture. 1965;16:144-58.
Gaviria CA, Ochoa CI, Sánchez N, Medina C, Lobo M, Mosquera AJ, et al. Actividad antioxidante e inhibición de la peroxidación lipídica de extractos de frutos de mortiño (Vaccinium meridionale SW). Boletín Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas. 2009;8(6):519-28.
Schauss AG, Wu X, Prior RL, Ou B, Huang D, Owens J, et al. Antioxidant capacity and other bioactivities of the freeze-dried Amazonian palm berry, Euterpe oleraceae mart. (açai). J Agric Food Chem. 2006;54(22):8604-10.
Kelebek H, Serkan S, Ahmet C, Turgut C. HPLC determination of organic acids, sugars, phenolic compositions and antioxidant capacity of orange juice and orange wine made from a Turkish cv. Kosan. Microchemical J. 2009;91:187-92.
Rautenbach F, Venter I. Hydrophilic and lipophilic antioxidant capacity of commonly consumed South African fruits, vegetables, grains, legumes, fats/oils and beverages. J Food Composition Analysis. 2010;23:753-61.
Romero M, Rojano B, Mella-Raipán J, Pessoa-Mahana CD, Lissi E, López-Alarcón C. Antioxidant capacity of pure compounds and complex mixtures evaluated by the ORAC-Pyrogallol Red Assay in the presence of Triton X-100 Micelles. Molecules. 2010;15(9):6152-67.
Naranjo M, Vélez T, Rojano B. Actividad antioxidante de café colombiano de diferentes calidades. Rev Cubana Plant Med. 2011;16(2):164-73.
Coisson JD, Travaglia AF, Piana AG, Capasso AM, Arlorio BM. Euterpe oleracea juice as a functional pigment for yogurt. Food Research International. 2005;38:893-7.
Prior RL, Wu X, Schaich K. Standardized methods for the determination of antioxidant capacity and phenolics in foods and dietary supplements. J Agric Food Chem. 2005;53:4290-4302.
Zulueta A, Esteve MJ, Frígola A. ORAC and TEAC assays comparison to measure the antioxidant capacity of food products. Food Chem. 2009;114:310-6.
Wang SY, Jiao HJ. Scavenging capacity of berry crops on superoxide radicals, hydrogen peroxide, hydroxyl radicals, and singlet oxygen. J Agric Food Chem. 2000;48:5677-84.
Wang SY, Lin HS. Antioxidant activity in fruit and leaves of blackberry, raspberry, and strawberry varies with cultivar and developmental stage. J Agric Food Chem. 2000;48:140-6.
Zheng W, Wang SY. Oxygen radical absorbing capacity of flavonoids and phenolic acids in blueberries, cranberries, chokeberries and lingonberries. J Agric Food Chem. 2003;51:502-9.
Prior RL, Cao G, Martin A, Sofic E, McEwen J, O'Brien Ch, et al. Antioxidant capacity as influenced by total phenolic and anthocyanin content, maturity, and variety of Vaccinium species. J Agric Food Chem. 1998;46(7):2686-93.
Wang SY, Ballington JR. Free radical scavenging capacity and antioxidant enzyme activity in deerberry (Vaccinium stamineum l.). Food Sci Technol Today. 2007;73:1352-61.
Capocasa F, Scalzo J, Mezzetti B, Battino M. Combining quality and antioxidant attributes in the strawberry: The role of genotype. Food Chem. 2008;111:872-8.
Kahkonen MP, Hopia AI, Heinonen M. Berry phenolics and their antioxidant activity. J Agr Food Chem. 2001;49:4076-82.
Al-Duais M, Muller L, Bohm V, Jetschke G. Antioxidant capacity and total phenolics of Cyphostemma digitatum before and after processing: use of different assays. Eur Food Res Technol. 2009;228:813-20.