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ISSN 1028-4796 (Impreso)

2012, Número 1

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Rev Cubana Plant Med 2012; 17 (1)


Capacidad antioxidante de dos variedades de Fragaria x ananassa (Weston) Duchesne (fresa) sometidas a variaciones en la nutrición vegetal

Carvajal DLM, Hadi YE, Cartagena R, Peláez C, Gaviria CA, Alberto RB

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 52
Paginas: 37-53
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RESUMEN

Introducción: la fresa pertenece a la familia Rosaceae, es una fuente de compuestos polifenólicos con actividad antioxidante, especialmente antocianinas, ácidos fenólicos y vitamina C; los cuales son protectores de la oxidación de muchos organelos. Las fresas poseen mayor actividad antioxidante que muchas frutas como: toronja, naranja, uva roja, kiwi. Sin embargo, los metabolitos secundarios.
Resultados: la unidad experimental 2-2-1-1 (Camarosa) mostró una actividad antioxidante de IC50 65,90 mg de fruta seca, contenido de fenoles totales de 984,75 y un contenido de antocianinas entre 83,1892,83; superiores a los encontrados en zonas templadas.
Conclusiones: la unidad experimental 2-1-1 Camarosa, con niveles superiores de materia orgánica e inferiores de nutrición mineral, presentan la mayor actividad antioxidante, incrementando sus posibilidades terapéuticas y conservando un buena respuesta fenotípica. en fresa se pueden potencializar haciendo una dosificación controlada de nutrientes en los suelos. Objetivos: evaluar la actividad antioxidante, el contenido de antocianinas y el contenido de fenoles totales de dos variedades de fresa (Camarosa y Osogrande) variando la nutrición de suelos con nitrógeno, potasio, fósforo, azufre, calcio, magnesio y materia orgánica, para establecer la relación entre los niveles de fertilización y la respuesta de la capacidad antioxidante. Métodos: se evaluaron las propiedades antioxidantes y algunos componentes polifenólicos de los extractos acuosos de muestras de fresas cultivadas en Colombia (Camarosa y Osogrande), provenientes de Antioquia, Colombia. El contenido de fenoles totales, se determinó por el método Follin Ciocalteu, las antocianinas por el método diferencial de pH y la actividad antioxidante usando el ensayo DPPH.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Valko M, Leibfritz D, Moncol J, Cronin MT, Mazur M, Telser J. Free radicals and antioxidants in normal physiological functions and human disease. Int J Biochem Cell Biol. 2007;(39):44-84.

  2. Slattery ML, Caan BJ. Nutrition and Colon Cancer. En: Coulston AM, Rock CL, Monsen ER, editores. Nutrition in the Prevention and Treatment of Disease. San Diego: Academic Press; 2001. p. 357-72.

  3. Havsteen BH. The biochemistry and medical significance of the flavonoids. Pharmacol Ther. 2002;(96):67-202.

  4. Pascual-Teresa S, Sanchez-Ballesta MT. Anthocyanins: from plant to health. Phytochem. 2007;(7):281-99.

  5. Wang J, Mazza G. Inhibitory effects of anthocyanins and other phenolic compounds on nitric oxide production in LPS/IFN-activated RAW 264.7 macrophages. J Agric Food Chem. 2002;(50):850-7.

  6. Navarro JM, Flores P, Garrido C, Martinez V. Changes in the contents of antioxidant compounds in pepper fruits at different ripening stages, as affected by salinity. Food Chem. 2006;(96):66-73.

  7. Kalt W, Ryan DAJ, Duy JC, Prior RL, Ehlenfeldt MK, Vander Kloet SP. Interspecific variation in anthocyanins, phenolics and antioxidant capacity among genotypes of highbush and lowbush blueberries (Vaccinium Section Cyanococcus spp.). J Agric Food Chem. 2001;(49):4761-7.

  8. Wang H, Cao G, Prior RL. Total antioxidant capacity of fruits. J Agric Food Chem. 1996;(44):701-5.

  9. Rekika D, Khanizadeh S, Deschenes M, Levasseur A, Charles T, Tsao R, et al. Antioxidant capacity and phenolic content of selected strawberry genotypes. Hortscience. 2005;(40):1777-81.

  10. Wang H, Cao GH, Prior RL. Oxygen radical absorbing capacity of anthocyanins. J Agric Food Chem. 1997;(45):304-9.

  11. Suzuki T, Iwai K. Constituents of Red Pepper Species: Chemistry, Biochemistry, Pharmacology, and food Science of the Pungent Principle of Capsicum Species. En: Arnold Brossi, editor. The Alkaloids: Chemistry and Pharmacology. San Diego: Academic Press; 1984. p. 227-99.

  12. Wang SY, Lin H. Antioxidant activity in fruits and leaves of blackberry, raspberry, and strawberry varies with cultivar and developmental stage. J Agric Food Chem. 2000;(48):140-6.

  13. Wang SY, Jiao H. Scavenging capacity of berry crops on superoxide radicals, hydrogen peroxide, hydroxyl radicals, and singlet oxygen. J Agric Food Chem. 2000;(48):5672-6.

  14. Zheng W, Wang SY. Effect of plant growth temperature on antioxidant capacity in strawberry. J Agric Food Chem. 2001;(49):4977-82.

  15. Connor AM, Luby JJ, Hancock JF, Berkheimer S, Hanson EJ. Changes in fruit antioxidant activity among blueberry cultivars during cold-temperature storage. J Agric Food Chem. 2002;(50):893-8.

  16. Hernanz D, Recamales AF, Melendez-Martinez AJ, Gonzalez-Miret ML, Heredia FJ. Assessment of the differences in the phenolic composition of five strawberry cultivars (Fragaria × ananassa Duch.) grown in two different soilless systems. J Agric Food Chem. 2007;(55):1846-52.

  17. Phililips DR, Hawson MG. Fertilizers for Tomatoes. Advisers, Horticultural División. U.S.A.: Department of Agriculture; 1998.

  18. Fallahi ER, Moon JW, Huang Y, Jensen R. Effects of ribulose 1,5 biphosphate carboxylase/ oxygenase content, leaf nitrogen and leaf morphology on CO2 assimilation in strawberry genotipes. Acta Hort. 2000;(527):177-83.

  19. Brito J. Pruebas de metodología para la extracción de substancias húmicas en los suelos. Agronomía Trop. 1972;(22):517-33.

  20. Brand-Willams W, Cuvelier ME, Berset C. Use of free radical method to evaluate antioxidant activity. Food Sci Technol. 1995;(28):25-30.

  21. Rojano BA, Gaviria CA, Gil MA, Saez JA, Schinella G, Tournier H. Actividad antioxidante del isoespintanol en diferentes medios. Vitae. 2008;(15):173-81.

  22. Dewanto V, Wu X, Adom KK, Liu RH. Thermal processing enhances the nutritional value of tomatoes by increasing total antioxidant activity. J Agric Food Chem. 2002;(50):3010-4.

  23. Giusti M, Wrolstad RE. Characterization and Measurement of Anthocyanins by UV-Visible Spectroscopy. En: Wrolstad RE, editor. Current Protocols in Food Analytical Chemistry. New York: John Wiley & Sons, Inc.; 2001. p. F1.2.1-F1.2.13.

  24. Salisbury FB, Ross CW. Fisiologia Vegetal. México D.F.: Grupo Editorial Iberoamérica; 1994. p. 336-7.

  25. Sánchez H. Fresa: requerimientos y normas de cultivo. Proplantas: y comercializadores de plantas; 2001. p. 8.

  26. Wang SY, Lin HS. Compost as a soil supplement increases the level of antioxidant compounds and oxygen radical absorbance capacity in strawberries. J Agric Food Chem. 2003;(51):6844-50.

  27. de Ancos B, González E, Cano MP. Differentiation of raspberry varieties according to anthocyanin composition. Z Lebensm Unters Forsch. 1999;(208):33-8.

  28. Meyers KJ, Watkins CB, Pritts MP, Liu RH. Antioxidant and Antiproliferative Activities of Strawberries. J Agric Food Chem. 2003;(51):6887-92.

  29. Häkkinen S. Flavonols and Phenolic Acids in Berries and Berry Products. Finland: Kuopio University Printing Office; 2000.

  30. Lespinasse M, Moncada X, Pérez LM. Actividad de PAL en Sclerotium rolfsii: ¿un mecanismo adicional de infección que utiliza este patógeno?. Simiente. 1999;69(3- 4):32-69.

  31. Lafuente MT, Mallent D, Sala JM, Zacarías L, Marcos JF, Alférez F, et al. Cambios fisiológicos y moleculares asociados a la susceptibilidad de frutos tropicales y subtropicales a la baja temperatura de conservación. Instituto de Agroquímica y Tecnología de Alimentos: Proyecto IATA [citado 4 Mar 2010]; 1999. Disponible en: http://www.iata.csic.es/iata/dcie/pcos/pacti.htf?pyi

  32. Kevin M, Davies E, Schwinn KE. Transcriptional regulation of secondary metabolism. Functional Plant Biology. 2003;(30):913-25.

  33. Zumft WG. The biological role of nitric oxide in bacteria. Arch Microbiol. 1993;(160):253-64.

  34. Palmer RMJ, Ferrige AG, Moncada S. Nitric oxide release accounts for the biological activity of endothelium-derived relaxing factor. Nature. 1987;(327):524-6.

  35. Cueto M, Hernández-Perea O, Martin R, Ventura ML, Rodrigo J, Lamas S, et al. Presence of nitric oxide synthase activity in roots and nodules of Lupinus albus. FEBS Lett. 1996;(398):159-64.

  36. Rodrigo J, Alonso D, Fernández AP, Serrano J, López JC, Encinas JM, et al. El óxido nítrico: síntesis, neuroprotección y neurotoxicidad. ANALES. 2000;(23):195- 236.

  37. Jansen NAK, Gaba V, Greenberg M. Higher plants and UV-B radiation balancing damage, repair and acclimation. Trends Plant Sci. 1998;(3):119-59.

  38. Tevini M. Erhöhte UV-B Strahlung: Ein Risiko für Nutzpflanzen? Biologie Unserer Zeit. 1996;(26):245-54.

  39. Zhang W, Furusaki S. Production of Anthocyanins by Plant Cell Cultures. Biotechnol. Bioprocess Eng. 1999;(4):231-52.

  40. Gould K. Nature's Swiss Army Knife: the diverse protectiveroles of anthocyanins in leaves. J Biomed Biotechnol. 2004;(5):314-20.

  41. Conn S, Curtin C, Bézier A, Franco C, Zhang W. Purification, molecular cloning, and characterization of glutathione S-transferases (GSTs) from pigmented Vitis vinifera L. cell suspension cultures as putative anthocyanin transport protein. J Exp Bot. 2008;(59):3621-34.

  42. Taiz L, Zeiger E. Plant Physiology. 2 ed. Massachusetts: Sinauer Associates Inc. Publisers; 2003.

  43. Pratt DE. Natural antioxidants from plant material. En: Huang IMT, Ho CT, Lee CY, editors. Phenolic compounds in food and their effects on health. New York: Am. Chemical Society; 1992. p. 54-71.

  44. Pineda-Alonso D, Slucci M, Lázaro R, Maiani G, Ferro-Luczzi A. Actividad antioxidante y potencial de sinergismo entre los principales constituyentes antioxidantes de algunos alimentos. Rev Cubana Aliment Nutr. 1999;(13):104-11.

  45. Rivas-Gonzalo JC, García-Alonso M, Pascual-Teresa S, Santos-Buelga C. Evaluation of the antioxidant propeties of fruits. Food Chem. 2003;(84):13-8.

  46. Plumb GW, De Pascual-Teresa S, Santos-Buelga C, Cheynier V, Williamson G. Antioxidant properties of catechins and proanthocyanidins: Effect of polymerisation, galloylation and glycosylation. Free Radical Res. 1998;(29):351-8.

  47. Kähkönen MP, Hopia AI, Vuorela HJ, Rauha J, Pihlaja K, Kujala TS, et al. Antioxidant activity of plant extracts containing phenolic compounds. J Agric Food Chem. 1999;(47):3954-62.

  48. Santos-Buelga C, Scalbert A. Proanthocyanidins and tanin-like compounds: nature, ocurrence, dietary intakeand effectson nutricion and health (review). Agric Food Chem. 2000;(80):1094-117.

  49. Singlenton VL, Rossi JA. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdicphosphotungstic acid reagents. Am J Enol Vitic. 1965;(16):144-58.

  50. Einbond L, Reynertson KA, Luo XD, Basile MJ, Kennelly E. Anthocyanin antioxidants from edible fruits. Food Chem. 2004;(84):23-8.

  51. Sichel G, Scalla M, Di Biblio AJ, Bonomo RP. In vitro Scanverger activity of some flavonoids and melanin against O2 •-. Free Radical Biol Med. 1991;11(1):1-8.

  52. van Acker SA, Tromp MN, Haenen GR, van der Vijgh WJ, Bast A. Flavonoids as scavengers of nitric oxide radicals. Biochem Biophys Res Commun. 1995;(214):755-9.




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