Calva-Rodríguez B, Cortés-Fernández R, Aja-Guardiola S, Ortiz-Chávez FJ, Cevenini-Roveri G

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 22
Paginas: 129-134
Archivo PDF: 74.62 Kb.

RESUMEN

Dos explotaciones del estado de Tlaxcala (uno productor de ganado de lidia y otro productor de leche), se utilizaron para evaluar dos tipos de hormonas, la gonadotropina de suero de yegua gestante (PMSG) y la hormona folículo estimulante (FSH), en relación con la cantidad y calidad de embriones que se obtuvieron por superovulación en el programa de transferencia de embriones. Para la superovulación, se formaron dos grupos de cinco hembras de lidia; administrando al primero, FSH en dosis descendentes de 100 U.I. a 37.5 U.I. durante cuatro días consecutivos, y al segundo grupo con la administración de PMSG, en una sola dosis de 2,000 U.I. Se obtuvieron con FSH, 25 embriones transferibles, 20 degenerados o inmaduros y 15 ovocitos no fertilizados, sin embargo con PMSG, se obtuvieron cinco embriones transferibles, cinco degenerados o inmaduros y cinco ovocitos no fertilizados, lo que indica que el tratamiento con FSH, es más efectivo que el de PMSG para superovular a hembras de lidia con una probabilidad estadísticamente significativa (P ‹ 0.05). Los 30 embriones que se obtuvieron para ser transferidos, fueron transportados a la explotación de leche, donde se llevó a cabo la transferencia de los mismos a 30 vaquillas respectivamente, mismas que fueron consideradas como receptoras. Del total de las transferencias, sólo cinco vaquillas se diagnosticaron como gestantes (16.6%), coincidiendo con embriones obtenidos de hembras superovuladas con FSH; cinco (16.6%) repitieron el estro a los 21 días de ciclo; otras cinco vaquillas (16.6%) repitieron el estro hasta los 37 días de ciclo; diez (33.3%) sólo presentaron un cuerpo lúteo en el ovario derecho y las cinco restantes (16.6%) además de presentar también un cuerpo lúteo en el ovario derecho, presentaban infección uterina. Esto se corroboró estadísticamente con una probabilidad estadística (P ‹ 0.05).

REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

1. Donaldson LE, Ward DN. Effects of luteinizing hormone on embryo production in superovulated cow. Vet Rec 1991; 119: 625-626.

2. Ginther OJ, Kastelic JP, Knopf L. Composition and characteristics of follicular waves during the bovine estrous cycle. An Reprod Sci 1989; 29: 187-200.

3. Ginther OJ, Knopf L, Kastelic JP. Temporal associations among ovarian events in cattle during oestrus cycles with two and three follicular waves. J Reprod Fertil 1989; 87: 223-230.

4. González A, Lussier JG, Carruthers TD, Murphy BD, Mapletoff RJ. Superovulation of heifers With folltropin: a new FSH preparation containing reduced LH activity. Theriogenology 1990; 33: 519-529.

5. Jainudeen MR. A review of embryo transfer technology in the buffalos in domestic buffalo production in Asia. International Atomic Energy Agency 1989; 102-112

6. Lindsell CS, Murphy BD, Mapletoff RJ. Superovulatory and endocrine responses in heifers treated with FSH-p at different stages of the estrous cycle. Theriogenology 1986; 26: 209-219.

7. Nassek L, Bo GA, Palas ZA, Mapletoff RJ. Superovulation in the cow with a ingle subcutaneous infection of folltropin. In: Anais. IX Congress. Brasileiro de Reproducción Animal 1991; 287.

8. Ocampo MB, Ocampo LC, Rayos AA, Kanawa H. Present status of embryo transfer in water buffalo (a review). Jpn J Vet Res 1989; 37: 167-179.

9. Pedersen T. Determination of follicle growth rate in the ovary of the immature mouse. J Reprod Fertil 1970; 21: 81-93

10. Peters H. Folliculogenesis in mammals: the vertebrate ovary. In: Junes RE, editor. Comparative biology. New York: Plenum Press 1978.

11. Petr J, Mika J, Filek F. The effect of PMSG priming on subsequent superovulatory response in dairy cows. Theriogenology 1990; 33: 1151-1155

12. Preterse MC, Taverne MAM, Kivip TAM, Willemse AH. Detection of corpora lutea and follicles in cow: a comparison of transvaginal ultrasonography and rectal palpation. Vet Rec 1990;126: 552-554.

13. Quirk SM, Hickey GJ, Fortune JE. Growth and regression of ovarian follicles during the follicular phase of the oestrus cycle in heifers undergoing spontaneous and PGF2a-induced luteolysis. J Reprod Fertil 1986; 77: 211-219.

14. Richards JS. Hormonal control of follicular growth and maduration in mammals: the vertebrate ovary. In: Junes RE, editor. Comparative biology. New York: Plenum Press; 1986; 331-336

15. Robertson DM, Gracomett M, Foulds LM, Lahnstein J, Gross NH, Hearn MT, Kretser DM. The insolation of inhibin a-subunit precursor proteins from bovine follicular fluid. Endocrinology 1989; 125: 2114-2149.

16. Saumande J, Chopin D. Induction of superovulation cyclic heifers: the inhibitory effect of large doses of PMSG. Theriogenology 1986; 25: 233-347.

17. Savio JD, Bongers H, Drust M, Lucy MC, Theacher WW. Follicular dynamics and superovulation response in Holstein cows treatet with FSH-p in different endocrine states. Theriogenology 1988; 35: 915-919.

18. Sarifuddin W, Jainudeen MR. Embryo collection in the swamp buffalo (Buffalo bubalis). In: 11th International Insemination. Dublin Ireland: University College; 1988; 4.

19. Schmidt M, Greve T, Callensen H. Superovulation of cattle with FSH containing standardized LH amount. 11th International Congress on animal reproduction and artificial insemination. Dublin Ireland: University College; 1988; 2.

20. Smith RA, Branca AA, Reichert LE. The subunit structure of the follitropin (FSH) receptor protoaffinity labeling of the membrane-bound receptor follitropin complex in situ. J Biol Chem 1985; 260: 14297-14303.

21. Tortonese DJ, Lewis PE, Papkoff H, Inskeep EK. Roles of the dominant folicle and the patter of oestradiol in induction of preovulatory surges of LH and FSH in prepuberal heifers by pulsatile low doses of LH. J Reprod Fertil 1990; 90: 127-135.

22. Zemjanis R. Reproducción animal. Diagnóstico y técnicas terapéuticas. Examen de vacas no embarazadas: Cambios en ovarios y oviductos. México D.F.: Editorial Limusa; 1977; 69.