2002, Número 4
Evolución de la pancreatitis aguda experimental en ratas Wistar sometidas a vagotomía
Álvarez-Castelló R
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 32
Paginas: 267-274
Archivo PDF: 158.95 Kb.
RESUMEN
Objetivo: determinar el efecto de la vagotomía troncular en etapas tempranas de la pancreatitis aguda experimental, inducida por ligadura del conducto de drenaje pancreático en ratas Wistar.
Material y métodos: estudio experimental, prospectivo, longitudinal y comparativo. Se utilizaron ratas Wistar con peso promedio de 307 ± 21 g, divididas en dos grupos de cinco ratas cada uno. Se realizó en todas ellas oclusión del conducto de drenaje pancreático. Al grupo control no se le realizó otro procedimiento. Al grupo experimental se le realizó vagotomía troncular inmediatamente después de haber ligado el conducto pancreático. A todas las ratas se les determinó amilasa sérica antes de iniciar el experimento, así como a las 2 y 4 horas de ocluir el conducto pancreático. Todas las ratas fueron sacrificadas y sometidas a extracción del páncreas para estudio histopatológico a las 4 horas de ser ocluido dicho conducto.
Resultados: el grupo control presentó elevación promedio de 522 U/l de amilasa a las 2 horas de la ligadura del conducto pancreático contra un incremento promedio de 138 U/l en el grupo experimental respecto a la muestra basal. A las 4 horas de la ligadura el incremento promedio fue de 1,149 con respecto al valor basal en el grupo control mientras que en el grupo experimental fue de 534 U/l. En cuanto a la valoración histopatológica de gravedad de la pancreatitis el grupo control presentó una calificación de 3.1 contra 2.3 del grupo experimental. Aparte del edema pancreático que fue más grave en el grupo control se encontró hemorragia y necrosis grasa únicamente en el grupo control en una rata. Todas las diferencias entre grupos fueron estadísticamente significativas.
La vagotomía troncular sí mejora el curso de la pancreatitis aguda experimental en ratas Wistar en etapas iniciales según criterios bioquímicos e histopatológicos.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Mouret J. Contribution a l’etude des cellules glandulaires (pancreas). Anat Physiol 1895;31:221-236.
Powley T, Berthound H, Fox E, Laughton W. The dorsal vagal complex forms a sensory-motor lattice: the circuitry of gastrointestinal reflexes. In: Ritter S, Ritter RC, Barnes CD, editors. Neuroanatomy and physiology of abdominal vagal afferents. Boca Raton, FL, USA: CRC;1992.p.55-79.
Fried G, Ogden W, Greeley G. Correlation of release and actions of cholecystokinin in dogs before and after vagotomy. Surgery 1983;93:786.
Strah K, Pappas T, Meléndez R. Contrasting cholinergic dependence of pancreatic and gallbladder responses to cholecystokinin. Am J Physiol 1986;250:G665.
Singer M, Solomon T, Rammert H. Effect of atropine on pancreatic response to HCl and secretin. Am J Physiol, 1981;240:G376-G380.
Solomon T. Regulation of pancreatic secretion. Clin Gastroenterol 1984;13:657.
Bunch G, Shields R. The effects of vagotomy on the intestinal handling of water and electrolytes. Gut 1973;14:116.
Masclee A, Jansen J, Driessen W. Effect of truncal vagotomy on cholecystokinin releases, gallbladder contraction, and gallbladder sensitivity to cholecystokinin in humans. Gastroenterology 1990;98:1338.
Li Y, Owyang C. Endogenous cholecystokinin stimulates pancreatic enzyme secretion via vagal afferent pathway in rats. Gastroenterology 1994;107:525-531.
Li Y, Owyang C. Vagal afferent pathway mediates physiological action of cholecystokinin on pancreatic enzyme secretion. J Clin Invest 1993;92:418-424.
Malagelada J, Go V, Sumerskill W. Altered pancreatic and biliary function after vagotomy and pyloroplasty. Gastroenterology 1974;66:22-27.
Moreland H, Johnson L. Effect of vagotomy on pancreatic secretion stimulated by endogenous and exogenous secretin. Gastroenterology 1971;60:425-431.
Beglinger C, Grossman M, Solomon T. Interaction between stimulants of exocrine pancreatic secretion in dogs. Am J Physiol 1984;246:G173-G179.
Valenzuela J, Weiner K, Saad C. Cholinergic stimulation of human pancreatic secretion. Dig Dis Sci 1986;31:615-619.
Adler G, Beglinger C, Braun U. Interaction of the cholinergic system and cholecystokinin in the regulation of endogenous and exogenous stimulation of pancreatic secretion in humans. Gastroenterology 1991;100:537-543.
Singer M, Niebel W, Uhde K. Dose-response effects of atropine on pancreatic response to secretin before and after truncal vagotomy. Am J Physiol 1985;248:G532-G538.
Singer M, Niebel W, Jansen J. Pancreatic secretory response to intravenous caerulein and intraduodenal tryptophan studies: before and after stepwise removal of the extrinsic nerves of the pancreas in dogs. Gastroenterology 1989;96:925-934.
Li Y, Hao Y, Owyang C. Cholecystokinin (CCK) and non-CCK stimulated pancreatic enzyme secretions are mediated by gastroduodenal mucosal vagal afferent fibers: functional evidence for distinct membrane afferent receptors. Gastroenterology 1994;A:303.
Li Y, Owyang C. Somatostatin inhibits pancreatic enzyme secretion at a central vagal site. Am J Physiol 1993;265:G251-G257.
Konturek J, Hengst K, Kulesza E. Role of endogenous nitric oxide in the control of exocrine and endocrine pancreatic secretion in humans. Gut 1997;40:86-91.
Li Y, Jiang Y, Owyang C. Central CGRP inhibits pancreatic enzyme secretion by modulation of vagal parasympathetic outflow. Am J Physiol 1998;275:G957-G963.
Debas H, Konturek S, Grossman M. Effect of extragastric and truncal vagotomy on pancreatic secretion in the dog. Am J Physiol 1975;228:1172.
Malagelada J, Go V, Summerskill W. Altered pancreatic and biliary function after vagotomy and pyloroplasty. Gastroenterology 1974;66:22.
Quezada V, Martínez H. Determinación de amilasa sérica postinfusión duodenal de lidocaína al 2% en pancreatitis aguda. Specialty Thesis. UNAM. IMSS;1999.
Adler G, Rohr G, Kern H. Alteration of membrane fusion as a cause of acute pancreatitis in the rat. Dig Dis Sci 1982;27:993.
Klöppel G, Dreyer T, Willemer S. Human acute pancreatitis: its pathogenesis in the light of immunocystochemical and ultrastructural findings in acinar cells. Virchows Arch 1986;409:791.
Rao N, Lombardi B. Acute hemorrhagic pancreatic necrosis in mice. Intraparenchymal activation of zymogens, and other enzyme changes in pancreas and serum. Gastroenterology 1976;70:720.
Borgström A, Lasson A. Trypsin-alpha 1-protease inhibitor complexes in serum and clinical course of acute pancreatitis. Scand J Gastroenterol 1984;19:1119.
Tocchi A, Lepre L, Mazzoni G. Idiopathic recurrent pancreatitis successfully treated by hepatic vagotomy. Ital J Gastroenterol Hepatol 1997;29(2):182-183.
Schmidt J, Rattner D, Lawandrowski K. A better model of acute pancreatitis for evaluating therapy. Ann Surg 1992;Jan:44-56.
Ohshio G, Saluja A, Steer M. Effects of short-term pancreatic duct obstruction in rats. Gastroenterology 1991;100:196-202.
Guía para el cuidado y uso de los animales de laboratorio. Edited by the Institute of Laboratory Animal Resources, Commission on Life Sciences, National Research Council, USA. Translated into Spanish by the Academia Nacional de Medicina; México. 1999.