2008, Número 4
Detección de Mycobacterium avium subespecie paratuberculosis, por medio de PCR-anidada a partir de muestras de heces de ovinos
Jaimes NG, Santillán FMA, Hernández COA, Córdova LD, Guzmán RCC, Arellano RB, Díaz AE, Tenorio GVR, Cuéllar OA
Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 29
Paginas: 377-386
Archivo PDF: 229.09 Kb.
RESUMEN
La paratuberculosis es una enteritis granulomatosa de curso crónico ocasionada por
Mycobacterium avium subespecie paratuberculosis (Map), afecta a rumiantes domésticos y silvestres. Map es excretada en las heces de animales que desarrollan la enfermedad, y la transmisión de la infección se da mediante la ingestión de alimentos y agua contaminados por heces de animales infectados. Con el objetivo de establecer el diagnóstico de paratuberculosis en ovinos por medio de la PCR-anidada a partir de muestras de heces, se trabajaron 204 muestras de heces y sueros de ovinos; las heces se evaluaron por PCR-anidada y cultivo bacteriológico, las muestras de sueros fueron analizadas por medio de inmunodifusión en agar gel (lDGA). Con la PCR-anidada se obtuvo un producto de amplificación 210 pb que corresponde a la IS900 de Map, en 61 de las 204 muestras. De éstas, 43 eran de animales positivos a IDGA y 18 negativos. Mediante cultivo bacteriológico se aislaron 17 cepas de Map; en este contexto, la IDGA detectó a 91 animales como positivos. La PCR-anidada permitió detectar en menor tiempo a mayor cantidad de animales que estaban eliminando al bacilo, aun cuando habían resultado negativos a la prueba serológica; este resultado se considera importante, ya que generalmente estos animales, al permanecer dentro de la granja, constituyen la principal fuente de infección para el rebaño. Se debe considerar a la PCR-anidada como alternativa, cuando se requiera el diagnóstico en breve tiempo, para conocer el estado sanitario del rebaño con respecto a paratuberculosis.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Erume J, Spergser J, Rosengarten R. Rapid detection of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis from cattle and zoo animals by Nested PCR. Afr Health Sci 2001; 1:83-89.
Garrido JM, Cortabarria N, Oguiza JA, Aduriz G, Juste RA. Use of PCR method on fecal samples for diagnosis of sheep paratuberculosis. Vet Microbiol 2000; 77: 379-386.
Collins DM, De Zoete M, Cavaignac M. Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis strains from cattle and sheep can be distinguished by PCR test based on a Novel DNA sequence difference. J Clin Microbiol 2002; 40: 4760-4762.
Clark CJ, Little D. The pathology of ovine paratuberculosis: Gross and histological changes in the intestine and others tissues. J Comp Pathol 1996; 114: 419-427.
Christopher-Hennings J, Dammen MA, Weeks SR, Epperson WB, Singh SN, Steinlicht GL et al. Comparison of two DNA extractions and Nested PCR, Real time PCR, a new commercial PCR assay, and bacterial culture for detection of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis in bovine feces. J Vet Diagn Invest 2003; 15: 87-93.
Gwozdz JM, Reichel MP, Murray A, Manketelow W, West DM, Thompson KG. Detection of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis in ovine tissues and blood by polymerase chain reaction. Vet Microbiol 1997; 51: 233-244.
Harris B, Barletta RG. Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis in Veterinary Medicine. Clin Microbiol Rev 2001; 14: 489-512.
Valentin-Weigand P. Johne’s disease: pathogenesis and problems related to diagnosis (Recent developments and perspectives in bovine medicine). XXII World Buiatrics Congress; 2002 August 18-23; Hannover (Germany). Hannover (Germany): World Association of Buiatrics, 2002:48-57.
Chavez-Gris G, Trigo TF, Svastova P, Pavlik I. Genetic polimorphisim identification from Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis in goats in central Mexico. Vet Mex 2004; 35: 75-82.
Cocito C, Gilot P, Coene M, De Kesel M, Poupart P, Vannuffel P. Paratuberculosis. Clin Microbiol Rev 1994; 7: 328-345.
Vary TH, Andersen PR, Green E, Hermon-Taylor J, Mc Fadden. Use of highly specific DNA probes and the Polymerase Chain Reaction to detect Mycobacterium paratuberculosis in Johne’s disease. J Clin Microbiol 1990; 28: 933-937.
Pavlik I, Matlova L, Bartl J. Parallel faecal and organ Mycobacterium avium subsp. parartuberculosis culture of different productivity types of cattle. Vet Microbiol 2000; 77: 309-324.
Payeur B, Jarnagin L, Marquardt G, Schaper A, Martín M. Manual of laboratory methods in veterinary mycobacteriology for the isolation and identification of Mycobacterium. Ames, Iowa: United States Department of Agriculture, Animal and Plant Health Inspection Service. Veterinary Services. NSLV, 1993.
Dimareli M, Sarris K. Comparison of DNA probe test and cultivation methods for detection of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis in caprine and ovine faeces. Aust Vet 2001; 79: 47-50.
Valentin-Weigand P, Goethe R. Pathogenesis of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis infection in ruminants: still more question than answers. Microbes Infect 1999; 1: 1121-1127.
Ikonomopoulos J, Gazouili M, Pavlik I, Bartos M. Comparative evaluation of PCR assays for the robust molecular detection of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis. J Microbiol Method 2004; 56:315-321.
Cortabarria N, Oguiza JA, Aduriz G, Juste RA. Use of a PCR method on fecal samples for diagnosis of sheep paratuberculosis. Vet Microbiol 2000; 77: 379-386.
Romero TA. Asociación de la excreción de Mycobacterium bovis con la respuesta inmune específica en un hato de alta prevalencia (tesis de maestría). México DF: UNAM 2003.
Buergelt CD, Williams JE. Nested PCR on blood and milk, for detection of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis DNA in clinical and subclinical bovine paratuberculosis. Aust Vet J 2004; 82 (8): 497-503.
Collins DM, Stephens DM, de Lisle. Comparasion of polymerase reactions tests and feacal culture for detecting Mycobacterium paratuberculosis in bovine faeces. Vet Microbiol 1993; 36: 289-299.
Sweeney R. Paratuberculosis (Johne’s Disease). Vet Clin North Am Food Anim Pract 1996; 12 (2): 305-452.
Blood DC, Radostits OM, Gay CC, Hincholiff KW. Medicina Veterinaria. Tratado de las enfermedades del Ganado bovino, ovino, porcino, caprino y equino. En: Henderson JA, Arundel JH, editores. Enfermedades ocasionadas por especies del género Mycobacterium. 9ª ed. Barcelona España: McGraw-Hill Interamericana, 2002; 1088-1103.
Taddei S, Robbi C, Cesena C, Rossi I, Schiano E. Detection of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis in bovine fecal samples: comparison of three polymerase chain reaction–based diagnostic test with a conventional culture method. J Vet Diagn Invest 2004; 16: 503-508.
Toman M, Faldyna M, Pavlik I. Inmunological characteristics of cattle with Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis infection. Vet Med. 2003. 48 (6): 147-154.
Ramirez CIC, Santillan FMA, Arellano RB, Morales AF, Tenorio GVR. Detection of Mycobacterium bovis nucleotide sequences from nasal mucus of experimentally inoculated goats. Vet Mex 2006; 37: 191-196.
Stabel JR, Bosworth TL, Kirkbride TA, Forde RL, Whitlock RH. A simple, rapid, and effective method for the extraction of Mycobacterium paratuberculosis DNA from fecal samples for Polymerase Chain Reaction. J Vet Diagn Invest 2004; 16: 22-30.
Stabel JR, Bannantine JP. Develoment of Nested PCR Method targeting a unique multicopy element, ISMap02, for detection of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis in fecal samples. J Clin Microbiol 2005; 43: 4744-4750.
Soto JP, Kruze J, Leiva S. Aislamiento de Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis de heces en rebaños lecheros infectados mediante el método de Cornell modificado. Arch Med Vet 2002; 34(2):1-5.
Whittington RJ, Fell S, Walter D, Mcallister M, Marsh I, Sergeant E et al. Use of pooled fecal culture for sensitive and economic detection of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis infection in flocks of sheep. J Clin Microbiol 2000; 38: 2550-2556.