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Salud Mental 2004; 27 (4)
Idioma: Ingles.
Referencias bibliográficas: 123
Paginas: 63-87
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RESUMEN
Extensos estudios celulares y conductuales han llevado a la postulación de que la memoria es codificada por cambios en la fuerza sináptica entre las neuronas, como se ha demostrado por medio de la correlación entre los cambios a largo plazo en la conducta de los animales y en las conexiones neuronales que generan una conducta específica en animales invertebrados o vertebrados; en donde modelos celulares de plasticidad sináptica, usando aproximaciones genéticas como el fenómeno de potenciación de largo plazo (LTP) o el fenómeno de la depresión de largo plazo (LTD), han demostrado que dependen de cambios a largo plazo en la actividad sináptica implicada en las conductas de aprendizaje y memoria. La memoria de largo plazo (LTM) es crucial para la sobrevivencia de los animales y representa un mecanismo fundamental para los eventos neurobiológicos en el Sistema Nervioso de las especies de vertebrados e invertebrados, incluyendo la humana. Los cambios a largo plazo en la conectividad sináptica, así como los cambios conductuales de largo plazo (ambas actividades son responsables de varias propiedades que caracterizan el fenómeno de LTM y se usan como parámetros funcionales para explicar el aumento de la actividad neuronal dependiente de estímulos) han demostrado que las señales ocurren inicialmente en el cuerpo celular. El fenómeno biológico de LTP es una forma de plasticidad sináptica ampliamente aceptada como un modelo celular que promueve la estabilización de sinapsis activas y que participa en eventos neurobiológicos como el desarrollo, el aprendizaje y la memoria. Una gran mayoría de los trabajos experimentales concerniente al fenómeno biológico del LTP en el aprendizaje ha sido enfocada a la actividad funcional de los receptores glutamatérgicos, tipo NMDA. Si bien muchas preguntas han surgido con respecto a si el fenómeno de LTP es equivalente a la función de memoria, esto es, si el fenómeno de LTP juega un papel real y preponderante en la función de memoria, entonces, una hipótesis apropiada debería postular que tanto el fenómeno de LTP como la actividad dependiente de los eventos de plasticidad sináptica y de múltiples formas de memoria que existen, compartan un denominador común, lo que permite postular la hipótesis que sugiere que la actividad dependiente de la plasticidad sináptica es inducida en sinapsis particulares y específicas durante la formación de aprendizaje y consolidación de la memoria. La plasticidad sináptica es un fenómeno fisiológico que induce patrones específicos de actividad neuronal, sostenidos por mecanismos químicos y moleculares, que dan origen a cambios en la eficiencia sináptica y en la excitabilidad neuronal que perdura por más tiempo que los eventos que las originan. Con base en algunas propiedades de plasticidad sináptica recientemente estudiadas y documentadas, el fenómeno de LTP puede ser propuesto como un mecanismo neuronal para el desarrollo de algunos sistemas de memoria, que incluyen la codificación inicial, el almacenamiento de la memoria y las primeras fases de la consolidación de la misma. Si el procesamiento funcional de la memoria es mediado por el fenómeno de LTP o LTD, muy probablemente ocurre como un proceso específico dentro de una red de circuitos neuronales, situando al fenómeno de LTP como un mecanismo universal para la codificación y almacenaje de la memoria. Asimismo, la codificación sería parte de una propiedad de red neuronal más que de un mecanismo neuronal de contactos sinápticos individuales. Por ejemplo, el tipo de información procesada en el hipocampo es muy diferente de la información procesada por la amígdala y esta información puede permanecer si el mecanismo de plasticidad que opera en cada región del cerebro se conserva con el tiempo. Décadas de investigación han demostrado que el fenómeno de LTP en el hipocampo es inducido por la actividad sináptica y por moléculas citoplasmáticas unidas a la membrana que son requeridas para traducir las señales extracelulares mediadas por la activación del receptor dentro de la activación de procesos de señalización intracelular. La mayoría de estos procesos depende de los movimientos del calcio intracelular, y de este modo los mecanismos dependientes del calcio son necesarios para la inducción y la expresión de este fenómeno celular. En este contexto, se ha demostrado que los receptores glutamatérgicos, tipo NMDA, son esenciales para la iniciación del fenómeno de LTP; sin embargo, la expresión de este fenómeno requiere la participación de los subtipos de receptores glutamatégicos, AMPA. Más aún, se ha demostrado que la inducción del fenómeno de LTP en la región hipocampal CA1 depende de los aumentos intracelulares de calcio, así como de la subsecuente activación de moléculas proteicas-calcio-dependientes, tal como lo representa la proteína kinasa dependiente de calcio, calmodulina (CaMKII). La expresión de esta proteína kinasa-dependiente de calcio en la neurona ha sido ampliamente demostrada en las densidades postsinápticas (PSD). Por otra parte, la expresión a largo plazo del fenómeno de LTP requiere la síntesis de proteínas, en donde las señales transitorias pueden estar ligadas a la activación de genes específicos que determinarán en última instancia el crecimiento y la remodelación de sinapsis potencialmente activas. Diversos tipos de sinapsis pueden expresar y hacer uso de distintos grupos de moléculas proteicas que participan en la activación de diferentes vías de señalamiento intracelular y que por igual son responsables de las fases iniciales y de sostenimiento de los eventos de plasticidad sináptica. Varios estudios han demostrado que las modificaciones neuronales de los receptores específicos de unión de alta afinidad de diferentes neurotransmisores o de las subunidades proteicas que componen estos receptores membranales en las densidades postsinápticas (PSD) representan uno de los mecanismos celulares por los cuales las neuronas regulan su actividad de reforzamiento sináptico. Por ejemplo, se ha demostrado que las dendritas neuronales pueden regular su propia síntesis de receptores proteicos membranales en respuesta a estímulos externos (por ejemplo, la subunidad GluR2 del receptor glutamatérgico, AMPA) y tales mecanismos moleculares implican importantes planteamientos en la comprensión de cómo las sinapsis individuales se consolidan selectivamente. Más aún, recientes experimentos han demostrado que moléculas que participan en vías de señalamiento intracelular (v.g., la proteína sináptica neuronal con actividad de GTPasa, denominada como SynGAP) están selectivamente expresadas y enriquecidas en neuronas que median respuestas sinápticas excitatorias. De forma interesante, estos estudios han demostrado que diversos subgrupos de proteínas kinasas (v.g., MAPKs, SAPKs, MAPKAKs, p38MAPK, etc.) implicadas en la activación de diversas vías de señalamiento intracelular son reponsables de la actividad funcional de distintos factores de trascripción (v.g., complejo AP-1, C-Fos, Jun, CREB, etc.) que a su vez regulan la expresión de múltiples genes de expresión temprana [intermediate early genes (IEG), por sus siglas en inglés] que son cruciales para el desarrollo neuronal, para la regulación del transporte vesicular de receptores glutamatérgicos a sinapsis específicas, así como para la inducción del fenómeno de LTP. Muchos de los cambios neuroquímicos y moleculares que ocurren en los eventos de plasticidad sináptica se pueden asociar con cambios morfo-celulares dinámicos en las espinas sinápticas, tal como diversos estudios lo han demostrado durante el desarrollo y la consolidación del fenómeno de LTP. Si bien diversos trabajos experimentales han demostrado la participación de las células gliales en la neurotransmisión excitatoria en el SNC, estas células, además de ejercer una función celular ampliamente conceptualizada como elementos de soporte estructural y de homeostasis, tienen un papel crucial en los eventos de plasticidad sináptica de tal forma que también regulan la información procesada en el cerebro de los mamíferos, incluyendo los sistemas neuronales de especies de invertebrados. No obstante, el fenómeno de LTP en el hipocampo ha sido el blanco de mayor intensidad de estudio y en particular del análisis genético molecular, donde a este respecto varios estudios han demostrado que el fenómeno de LTP está alterado cuando ciertos genes particulares son inhabilitados permanentemente (knockout) o temporalmente (knockdown) en su expresión funcional y/o sobre-expresados en ratones mutantes nulos o en ratones transgénicos. Estos estudios han llevado a observaciones interesantes que demuestran que dentro de las diferentes cepas naturales del ratón existen variaciones naturales en la expresión del fenómeno de LTP.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
AHN S, OLIVE M, AGGARWAL S, KRYLOV D, GINTY DD, VINSON C: A dominant-negative inhibitor of CREB reveals that it is a general mediator of stimulus-dependent transcription of c-fos. Mol Cell Biol, 182:967-77, 1998.
ARAKI T, MILBRANDT J: ZNRF proteins constitute a family of presynaptic E3 ubiquitin ligases. J Neurosci, 23(28):9385-94, 2003.
ATKINS CM, SELCHER JC, PETRAITIS JJ, TRZASKOS JM, SWEATT JD: The MAPK cascade is required for mammalian associative learning. Nat Neurosci, (7):602-609, 1998.
BAILEY CH, KAANG BK, CHEN M, MARTIN KC, LIM CS et al.: Mutation in the phosphorylation sites of MAP kinase blocks learning-related internalization of apCAM in Aplysia sensory neurons. Neuron, 18(6):913-924, 1997.
BARRIA A, DERKACH V, SODERLING T: Identification of the Ca2+/calmodulin-dependent protein kinase II regulatory phosphorylation site in the alpha-amino-3- hydroxyl-5-methyl-4-isoxazole-propionate-type glutamate receptor. J Biol Chem, 272(52):32727-32730, 1997.
BENKE TA, LUTHI A, ISAAC JT, COLLINGRIDGE GL: Modulation of AMPA receptor unitary conductance by synaptic activity. Nature, 393(6687):793-797, 1998.
BERMAN DE, HAZVI S, ROSENBLUM K, SEGER R, DUDAI Y: Specific and differential activation of mitogenactivated protein kinase cascades by unfamiliar taste in the insular cortex of the behaving rat. J Neurosci, 18(23):10037- 10044, 1998.
BITO H, DEISSEROTH K, TSIEN RW: CREB phosphorylation and dephosphorylation: a Ca(2+)- and stimulus duration-dependent switch for hippocampal gene expression. Cell, 87(7):1203-14, 1996.
BLITZER RD, CONNOR JH, BROWN GP, WONG T, SHENOLIKAR S et al.: Gating of CaMKII by cAMPregulated protein phosphatase activity during LTP. Science, 280(5371):1940-42, 1998.
BLUM S, MOORE AN, ADAMS F, DASH PK: A mitogenactivated protein kinase cascade in the CA1/CA2 subfield of the dorsal hippocampus is essential for long-term spatial memory. J Neurosci; 19(9):3535-44, 1999.
BRANDON NJ, UREN JM, KITTLER JT, WANG H, OLSEN R et al.: Subunit-specific association of protein kinase C and the receptor for activated C kinase with GABA type A receptors. J Neurosci, 19(21):9228-34, 1999.
BRAUN AP, SCHULMAN H: The multifunctional calcium/ calmodulin-dependent protein kinase: from form to function. Annu Rev Physiol, 57:417-445, 1995.
BURBEA M, DREIER L, DITTMAN JS, GRUNWALD ME, KAPLAN JM: Ubiquitin and AP 180 regulte the abundance of GLR- 1 glutamate receptors at postsynaptic elements in elegans. Neuron, 35:107-120, 2002.
BYRNE JH, KANDEL ER: Presynaptic facilitation revisited: state and time dependence. J Neurosci, 16(2):425- 35, 1996.
CAMMAROTA M, BEVILAQUA LR, ARDENGHI P, PARATCHA G, LEVI DE STEIN M et al.: Learningassociated activation of nuclear MAPK, CREB and Elk-1, along with Fos production, in the rat hippocampus after a one-trial avoidance learning: abolition by NMDA receptor blockade. Brain Res Mol Brain Res, 76(1):36-46, 2000.
CHANG BY, CONROY KB, MACHLEDER EM, CARTWRIGHT CA: RACK1, a receptor for activated C kinase and a homolog of the beta subunit of G proteins, inhibits activity of src tyrosine kinases and growth of NIH 3T3 cells. Mol Cell Biol, 18(6):3245-3256, 1998.
CHEN C, TONEGAWA S: Molecular genetic analysis of synaptic plasticity, activity-dependent neural development, learning, and memory in the mammalian brain. Annu Rev Neurosci, 20:157-84, 1997.
CHEN WG, WEST AE, TAO X, CORFAS G, SZENTIRMAY MN et al.: Upstream stimulatory factors are mediators of Ca2+-responsive transcription in neurons. J Neurosci, 23(7):2572-81, 2003.
COHEN P: The structure and regulation of proteinphosphatases. Annu Rev Biochem, 58:453-508, 1989.
DAVIES SN, LESTER RA, REYMANN KG, COLLINGRIDGE GL: Temporally distinct pre- and postsynaptic mechanisms maintain long-term potentiation. Nature, 338(6215):500-503, 1989.
De CESARE D, FIMIA GM, AND SASSONE-CORSI P: Signaling routes to CREM and CREB: plasticity in transcriptional activation. Trends Biochem Sci, 24(7):281-5, 1999.
DUDEK H, DATTA SR, FRANKE TF, BIRNBAUM MJ, YAO R et al.: Regulation of neuronal survival by the serinethreonine protein kinase Akt. Science, 275(5300):628-30, 1997.
DUFFY SN, NGUYEN PV: Postsynaptic application of a peptide inhibitor of cAMP-dependent protein kinase blocks expression of long-lasting synaptic potentiation in hippocampal neurons. J Neurosci, 23(4):1142-50, 2003.
EBINU JO, BOTTORFF DA, CHAN EY, STANG SL, DUNN RJ et al.: RasGRP, a Ras guanyl nucleotide- releasing protein with calcium- and diacylglycerol-binding motifs. Science, 280(5366):1082-6, 1998.
ENGLISH JD, SWEATT JD: Activation of P42 mitogenactivated protein kinase in hippocampal long-term potentiation. Proc Natl Acad Sci USA, 90:8342-8346, 1996.
ENGLISH JD, SWEATT JD: A requirement for the mitogenactivated protein kinase cascade in hippocampal long term potentiation. J Biol Chem, 272(31):19103-19106, 1997.
FEIG LA: Guanine-nucleotide exchange factors: a family of positive regulators of Ras and related GTPases. Curr Opin Cell Biol, 6(2):204-11, 1994.
FINKBEINER S: CREB couples neurotrophin signals to survival messages. Neuron, 25(1):11-4, 2000.
FRANKE TF, KAPLAN DR, CANTLEY LC: PI3K: downstream AKTion blocks apoptosis. Cell, 88(4):435-7, 1997.
FUKUNAGA K, STOPPINI L, MIYAMOTO E, MULLER D: Long-term potentiation is associated with an increased activity of Ca2+/calmodulin-dependent protein kinase II. J Biol Chem, 268(11):7863-7867, 1993.
GEIJSEN N, SPAARGAREN M, RAAIJMAKERS JA, LAMMERS JW, KOENDERMAN L, COFFER PJ: Association of RACK1 and PKCbeta with the common beta-chain of the IL-5/IL-3/GM-CSF receptor. Oncogene, 18(36):5126-5130, 1999.
GHOSH A, GREENBERG ME: Calcium signaling in neurons: molecular mechanisms and cellular consequences. Science, 268(5208):239-47, 1995.
GIESE KP, FEDOROV NB, FILIPKOWSKI RK, SILVA AJ: Autophosphorylation at Thr286 of the alpha calciumcalmodulin kinase II in LTP and learning. Science, 279(5352):870-873, 1998.
GIOVANNINI MG, EFOUDEBE M, PASSANI MB, BALDI E, BUCHERELLI C et al.: Improvement in fear memory by histamine-elicited ERK2 activation in hippocampal CA3 cells. J Neurosci, 23(27):9016-23, 2003.
HALL A: G proteins and small GTPases: distant relatives keep in touch. Science, 280(5372):2074-5, 1998.
HAYASHI Y, SHI SH, ESTEBAN JA, PICCINI A, PONCER JC, MALINOV R: Driving AMPA receptors into synapses by LTP and CaMKII: requirement of GluR1 and PDZ domain interaction. Science, 287:2262-2267, 2000.
HOCHSTRASSER M: Ubiquitin-dependent protein degradation. Annu Rev Genet, 30:405-39, 1996.
HUSI H, WARD MA, CHOUDHARY JS, BLACKSTOCK WP, GRANT SG: Proteomic analysis of NMDA receptoradhesion protein signaling complexes. Nat Neurosci, 3(7):661-669, 2000.
IMPEY S, OBRIETAN K, STORM DR: Making new connections: role of ERK/MAP kinase signaling in neuronal plasticity. Neuron, 23(1):11-14, 1999.
INGLESE J, KOCH W, TOUHARA K, LEFKOVITZ R: G beta-gamma interactions with PH domins and Ras- MAPK signaling pathways. Trends Biochem Sci, 20:151-155, 1995.
ISAAC JT, NICOLL RA, MALENKA RC: Evidence for silent synapses: implications for the expression of LTP. Neuron, 15(2):427-34, 1995.
JAWORSKI J, MIODUSZEWSKA B, SANCHEZ-CAPELO A, FIGIEL I, HABAS A et al.: Inducible cAMP early repressor, an endogenous antagonist of cAMP responsive element-binding protein, evokes neuronal apoptosis in vitro. J Neurosci, 23(11):4519-26, 2003.
JIA Z., AGOPYAN N., MIU P. XIONG Z., HENDERSON J et al.: Enhanced LTP in mice deficient in the AMPA receptor GluR2. Neuron, 17(5):945-956, 1996.
KAMEYAMA K, LEE HK, BEAR MF, HUGANIR RL: Involvement of a postsynaptic protein kinase A substrate in the expression of homosynaptic long-term depression. Neuron, 21(5):1163-1175, 1998.
KENNEDY MB: Signal transduction molecules at the glutamatergic postsynaptic membrane. Brain Res Rev, 26:243- 257, 1998.
KENNEDY MB: The postsynaptic density at glutamatergic synapses. Trends Neurosci, 20(6):264-268, 1997.
KIM J, LEE HK, TAKAMIYA K, HUGANIR R: The role of synaptic GTPase- activating protein in neuronal development and synaptic plasticity. J Neurosci, 23(4):1119-24, 2003.
KLANN E, CHEN SJ, SWEATT JD: Mechanism of protein kinase C activation during the induction and maintenance of long-term potentiation probed using a selective peptide substrate. Proc Natl Acad Sci USA, 90(18):8337-41, 1993.
KOJIMA N, WANG J, MANSUY IM, GRANT SG, MAYFORD M, KANDEL ER: Rescuing impairment of longterm potentiation in fyn-deficient mice by introducing Fyn transgene. Proc Natl Acad Sci USA, 94(9):4761-4765, 1997.
KORNHAUSER JM, GREENBERG ME: A kinase to remember: dual roles for MAP kinase in long-term memory. Neuron, 18(6):839-842, 1997.
KOUHARA H, HADARI YR, SPIVAK-KROIZMAN T, SCHILLING J, BAR-SAGI D et al.: A lipid-anchored Grb2- binding protein that links FGF-receptor activation to the Ras/MAPK signaling pathway. Cell, 89(5):693-702, 1997.
LEE SH, PARK J, CHE Y, HAN PL, LEE JK: Constitutive activity and differential localization of p38alpha and p38beta MAPKs in adult mouse brain. J Neurosci, 60(5):623-631, 2000.
LEONARD AS, LIM IA, HEMSWORTH DE, HORNE MC, HELL JW: Calcium/calmodulin-dependent protein kinase II is associated with the N-methyl-D-aspartate receptor. Proc Natl Acad Sci USA, 96(6):3239-44, 1999.
LLEDO PM, HIELMSTAD GO, MUKHERJI S, SODERLING TR et al.: Calcium/calmodulin-dependent kinase II and long-term potentiation enhance synaptic transmission by the same mechanism. Proc Natl Acad Sci USA, 92(24):11175-11179, 1995.
LOPEZ-ILASCA M, CRESPO P, PELLICI P, GUTKIND J, WETZKER R: Linkage of G protein- coupled receptors to MAPK signaling pathway through PI 3- kinase. Science, 275:394-397, 1997.
LOWY DR, WILLUMSEN BM: Function and regulation of ras. Annu Rev Biochem, 62:851-91, 1993.
LU WY, XIONG ZG, LEI S, ORSER BA, DUDEK E et al.: G-protein-coupled receptors act via protein kinase C and Src to regulate NMDA receptors. Nat Neurosci, 2(4):331-8, 1999.
LU YM, RODER JC, DAVIDOW J, SALTER MW: Src activation in the induction of long- term potentiation in Ca1 hippocampal neurons. Science, 279:1363-1368, 1998.
MAKHINSON M, CHOTINER JK, WATSON JB, O’DELL TJ: Adenylyl cyclase activation modulates activity-dependent changes in synaptic strength and Ca2+/calmodulin-dependent kinase II autophosphorylation. J Neurosci, 19(7):2500-2510, 1999.
MALENKA RC: Synaptic plasticity in the hippocampus: LTP and LTD. Cell, 78:535-538, 1994.
MALINOW R, MALENKA RC: AMPA receptor trafficking and synaptic plasticity. Annu Rev Neurosci, 25:103-126, 2002.
MAMMEN AL, KAMEYAMA K, ROCHE KW, HUGANIR RL: Phosphorylation of the alpha-amino-3-hydroxy-5- methylisoxazole4-propionic acid receptor GluR1 subunit by calcium/calmodulin-dependent kinase II. J Biol Chem, 272(51): 32528-32533, 1997.
MAN YT, LIN JW, JU WH, AHMADIAN G, LIU L et al.: Regulation of AMPA receptor- mediated synaptic receptor transmission by clathrin- dependent receptor internalization. Neuron, 25:649-662, 2000.
MARSHALL CJ: Ras effectors. Curr Opin Cel Biol, 8:197- 204, 1996.
MARTIN KC, MICHAEL D, ROSE JC, BARAD M, CASADIO A et al.: MAP kinase translocates into the nucleus of the presynaptic cell and is required for long-term facilitation in Aplysia. Neuron, 18(6):899-912, 1997.
McCORMICK F: Ras- related proteins in signal transduction and growth control. Mol Reprod Dev, 42:500-506, 1995.
McGLADE-McCULLOH E, YAMAMOTO H, TAN SE, BRICKEY DA et al.: Phosphorylation and regulation of glutamate receptors by calcium/calmodulin-dependent protein kinase II. Nature, 362(6421):640-642, 1993.
MONYER H, BURNASHEV N, LAURIE DJ, SAKMANN B, SEEBURG PH: Developmental and regional expression in the rat brain and functional properties of four NMDA receptors. Neuron, 12(3):529-540, 1994.
MOON IS, APPERSON ML, KENNEDY MB: The major tyrosine-phosphorylated protein in the postsynaptic density fraction is N-methyl-D-aspartate receptor subunit 2B. Proc Natl Acad Sci USA, 91(9):3954-3958, 1994.
MOURTON T, HELLBERG CB, BURDEN-GULLEY SM, HINMAN J, RHEE A, BRADY-KALNAY SM: The PTPmu protein-tyrosine phosphatase binds and recruits the scaffolding protein RACK1 to cell-cell contacts. J Biol Chem, 276(18):14896-14901, 2001.
NAYAK AS, MOORE CI, BROWNING MD: Ca2+/ calmodulin- dependent protein kinase II phosphorylation of the presynaptic protein synapsin I is persistently increased during long- term potentiation. Proc Natl Acad Sci USA, 93:15451-15456, 1996.
NESTLER E, DUMAN R: Basic Neurochemistry. Molecular,Cellular and Medical Aspects. Chapter 20: G Proteins. Sixth edition. Ed. Lippincott-Raven. Pag. 401- 414, New York, 1999.
NESTLER EJ, HYMAN SE, MALENKA RC: In: Molecular Neuropharmacology: A foundation for Clinical Neuroscience. Nestler EJ, Hyman SE, Malenka RC (eds). McGraw Hill, pp: 115- 137, New York, 2001.
NISHIMUNE A, ISAAC JT, MOLNAR E, NOEL J, NASH SR et al.: NSF binding to GluR2 regulates synaptic transmission. Neuron, 21(1):87-97, 1998.
O´BRIEN RJ, KAMBOJ S, EHLERS MD, ROSEN KR, FISCHBACH GD, HUGANIR RL: Activity- dependent modulation of synaptic AMPA receptor accumulation. Neuron, 21:1067-1078, 1998.
ORBAN PC, CHAPMAN PF, BRAMBILLA R: Is RASdependent signaling necessary long- term plasticity? Trends Neuroscience, 22:38-44, 1999.
ORTIZ J, HARRIS HW, GUITART X, TERWILLIGER RZ, HAYCOCK JW, NESTLER EJ: Extracellular signalregulated protein kinases (ERKs) and ERK kinase (MEK) in brain: regional distribution and regulation by chronic morphine. J Neurosci, 15(2):1285-1297, 1995.
PAWSON T, SCOTT JD: Signaling through scaffold, anchoring, and adaptor proteins. Science, 278(5346):2075-2080, 1999.
PEREDA AE, BELL TD, CHANG BH, CZERNIK AJ, NAIRN AC et al.: Ca2+/calmodulin-dependent kinase II mediates simultaneous enhancement of gap-junctional conductance and glutamatergic transmission. Proc Natl Acad Sci USA, 95(22):13272-13277, 1998.
PITTENGER C, KANDEL ER: In search of general mechanisms for long-lastingplasticity: Aplysia and the hippocampius. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci, 358(1432):757-63, 2003.
PESSIN JE, THURMOND DC, ELMENDORF JS, COKER KJ, OKADA S: Molecular basis of insulinstimulated GLUT4 vesicle trafficking. J Biol Chem, 274(5):2593-2596, 1999.
ROCHE KW, O’BRIEN RJ, MAMMEN AL, BERNHARDT J, HUGANIR RL: Characterization of multiple phosphorylation sites on the AMPA receptor GluR1 subunit. Neuron, 16(6):1179-1188, 1996.
RON D, CHEN CH, CALDWELL J, JAMIESON L, ORR E, MOCHLY-ROSEN D: Cloning of an intracellular receptor for protein kinase C: a homolog of the beta subunit of G proteins. Proc Natl Acad Sci USA, 91(3):839-843, 1994.
ROSE JK, KAUN KR, CHEN SH, RANKIN CH: GLR-1, a non-NMDA glutamate receptor homolog, is critical for long-term memory in Caenorhabditis elegans. J Neurosci, 23(29):9595-9, 2003.
ROSENBLUM K, DUDAI Y, RICHTER-LEVIN G: Longterm potentiation increases tyrosine phosphorylation of the N- methyl- D- aspartate receptor subunit 2B in rat dentate gyrus in vivo. Proc Natl Acad Sci USA, 93:10457-10460, 1996.
ROSTAS JAP, BRENT VA, VOSS K, ERRINGTON ML, BLISS TV, GURD JW: Enhanced tyrosine phosphorylation of the 2B subunit of the N- methyl- D- aspartate receptor in long- term potentiation. Proc Natl Acad Sci USA, 93:10452-56, 1996.
SACTOR TC, OSTEN P, VALSAMIS H, JIANG S, NAIK MU, SUBLETTE E: Persistent activation of the zeta isoform of protein kinase Cin the maintenance of long-term potentiation. Proc Natl Acad Sci USA, 90:8342-8346, 1993.
SALTER MW: Src, N-methyl-D-aspartate (NMDA) receptors, and synaptic plasticity. Biochem Pharmacol, 56(7):789-798, 1998.
SCHAFE GE, NADEL NV, SULLIVAN GM, HARRIS A, LeDOUX JE: Memory consolidation for contextual and auditory fear conditioning is dependent on protein synthesis, PKA, and MAP kinase. Learn Mem, 6(2):97-110, 1999.
SCHLESSINGER J: SH2/SH3 signaling proteins. Curr Opin Genet Dev, 4(1):25-30, 1994.
SCHNEIDER T, IGELMUND P, HESCHELER J: G protein interaction with K+ and Ca2+ channels. Trends Pharmacol Sci, 18:8-11, 1997.
SEIDENMAN KJ, STEINBERG JP, HUGANIR R, MALINOW R: Glutamate receptor subunit 2 Serine 880 phosphorylation modulates synaptic transmission and mediates plasticity in CA1 pyramidal cells. J Neurosci, 23(27):9220-8, 2003.
SILVA AJ, MURPHY GG: cAMP and memory: a seminal lesson from Drosophila and Aplysia. Brain Res Bull, 50(5- 6):441-2, 1999.
SILVA AJ, SMITH AM, GIESE KP: Gene targeting and the biology of learning and memory. Annu Rev Genet, 31:527-46, 1997.
SODERLING T, DERKACH V: Postsynaptic protein phosphorylation and LTP. Trends Neuroscience, 23:75-80, 2000.
SONG I, KAMBOJ S, XIA J, DONG H, LIAO D, HUGANIR RL: Interaction of the N-ethylmaleimide-sensitive factor with AMPA receptors. Neuron, 21(2):393-400, 1998.
SPIER AD: Synapse to nucleus signaling: is Ca2+ all you need? Trends Neurosci, 24(7):371, 2001.
SPRENGEL R, SUCHANEK B, AMICO C, BRUSA R, BURNASHEV N et al.: Importance of the intracellular domain of NR2 subunits for NMDA receptor function in vivo. Cell, 92(2):279-89, 1998.
STRACK S, BARBAN MA, WADZINSKI BE, COLBRAN RJ: Differential inactivation of postsynaptic densityassociated and soluble Ca2+/calmodulin-dependent protein kinase II by protein phosphatases 1 and 2A. J Neurochem, 68(5):2119-2128, 1997.
SWANK MW: Pharmacological antagonism of tyrosine kinases and MAP kinase in brainstem blocks taste aversion learning in mice. Physiol Behav, 69(4-5):499-503, 2000a.
SWANK MW: Phosphorylation of MAP kinase and CREB in mouse cortex and amygdala during taste aversion learning. Neuroreport, 11(8):1625-1630, 2000b.
TAN SE, WENTHOLD RJ, SODERLING TR: Phosphorylation of AMPA-type glutamate receptors by calcium/calmodulin-dependent protein kinase II and protein kinase C in cultured hippocampal neurons. J Neurosci, 14(3 Pt 1):1123-1129, 1994.
TEZUKA T, UMEMORI H, AKIYAMA T, NAKANISHI S, YAMAMOTO T: PSD- 95 promotes Fyn- mediated tyrosine phosphorylation of the N- methyl- D- aspartate receptor subunit NR2A. Proc Natl Acad Sci USA, 96:435-440, 1999.
THIELS E, KANTEREWICZ BI, NORMAN ED, TRZASKOS JM, KLANN E: Long-term depression in the adult hippocampus in vivo involves activation of extracellular signal-regulated kinase and phosphorylation of Elk-1. J Neurosci, 22(6):2054-62, 2002.
TURNER K, BURGOYNE R, MORGAN A: Protein phosphorylation and the regulation of synaptic membrane traffic. Trends Neuroscience, 22:459-464, 1999.
TURRIGIANO, GG, NELSON SB: Hebb and homeostasis in neuronal plasticity. Curr Opin Neurobiol, 10:358-364, 2002.
VANHOUTTE P, BARNIER JV, GUIBERT B, PAGES C, BESSON MJ et al.: Glutamate induces phosphorylation of Elk-1 and CREB, along with c-fos activation, via an extracellular signal-regulated kinase-dependent pathway in brain slices. Mol Cell Biol, 19(1):136-46, 1999.
VOSSLER MR, YAO H, YORK RD, PAN MG, RIM CS, STORK PJ: cAMP activates MAP kinase and Elk-1 through a B-Raf- and Rap1-dependent pathway. Cell, 89(1):73-82, 1997.
WALIKONIS RS, JENSEN ON, MANN M, PROVANCE DW Jr, MERCER JA, KENNEDY MB: Identification of proteins in the postsynaptic density fraction by mass spectrometry. J Neurosci, 20(11):4069-4080, 2000.
WANG JH, KELLY PT: Postsynaptic injection of CA2+/CaM induces synaptic potentiation requiring CaMKII and PKC activity. Neuron, 15(2):443-452, 1995.
WANG YT, LINDEN DJ: Expression of cerebellar long term depression requires postsynaptic endocytocis clathrin. Mediated endocytocis. Neuron, 25:635-647, 2000.
WESTPHAL RS, TAVALIN SJ, LIN JW, ALTO NM, FRASER ID et al.: Regulation of NMDA receptors by an associated phosphatase-kinase signaling complex. Science, 285(5424):93-96, 1999.
WICKMAN KD, CLAPHAM DE: G-protein regulation of ion channels. Curr Opin Neurobiol, 75(3):278-285, 1995.
XING J, GINTY DD, GREENBERG ME: Coupling of the RAS-MAPK pathway to gene activation by RSK2, a growth factor-regulated CREB kinase. Science, 273(5277):959-63, 1996.
YAKA R, THORNTON C, VAGTS A, PHAMLUONG K, BONCI A, RON D: NMDA receptor function is regulated by the inhibitory scaffolding protein, RACK1. Proc Natl Acad Sci USA, 99(8):5710-5715, 2001.
YAMAKURA T, SHIMOJI K: Subunit- and site-specific pharmacology of the NMDA receptor channel. Prog Neurobiol, 59(3):279-298, 1999.
YARWOOD SJ, STEELE MR, SCOTLAND G, HOUSLAY MD, BOLGER GB: The RACK1 signaling scaffold protein selectively interacts with the cAMP-specific phosphodiesterase PDE4D5 isoform. J Biol Chem, 274(21):14909-14917, 1999.
YORK RD, YAO H, DILLON T, ELLIG CL, ECKERT SP et al.: Rap1 mediates sustained MAP kinase activation induced by nerve growth factor. Nature, 392(6676):622-6, 1998.
YU XM, ASKALAN R, KEIL GJ 2nd, SALTER MW et al.: NMDA channel regulation by channel- associated protein tyrosine kinase Scr. Science, 275:674-678, 1997.
ZAMANILLO D, SPRENGEL R, HVALBY O, JENSEN V, BURNASHEV N: Importance of AMPA receptors for hippocampal synaptic plasticity but not for spatial learning. Science, 284(5421):1805-1811, 1999.
ZHEN X, DU W, ROMANO AG, FRIEDMAN E, HARVEY JA: The p38 mitogen-activated protein kinase is involved in associative learning in rabbits. J Neurosci, 21(15):5513-5519, 2001.
ZHEN XC, CAI GP, URUYU K, JOHNSON GP, FRIEDMAN E: Age- associated impairment in brain MAPK signal pathways and effect of caloric restriction in Fischer 244 rats. J Gerontol A Biol Sci Med Sci, 54:B539-B548, 1999.
ZHENG F, GINGRICH MB, TRAYNELIS SF, CONN PJ: Tyrosine Kinase potentiates NMDA receptor currents by reducing tonic zinc inhibition. Nat Neurosci, 1:185-191, 1998.