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ISSN 0185-3252 (Impreso)
Revista de la Asociación Médica del Centro Médico ABC

2007, Número 4

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An Med Asoc Med Hosp ABC 2007; 52 (4)


Actividad in vitro de vancomicina, colistina, nistatina (VCN) y ciprofloxacino contra micoplasmas

Rivera-Tapia JA, Cedillo-Ramírez L, Lechuga-Licona LC, Fuentes-García G

Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 22
Paginas: 181-185
Archivo PDF: 123.07 Kb.


RESUMEN

Los micoplasmas son los microorganismos más pequeños de vida libre, presentan un diámetro en promedio de 300 nm, están limitados por una membrana y carecen de pared celular. No muestran susceptibilidad a la penicilina y otros antibióticos que actúan a nivel de la pared celular. Los micoplasmas son susceptibles a antibióticos de amplio espectro, los cuales sólo inhiben su multiplicación, pero no los matan. Objetivo: Evaluar la actividad in vitro de vancomicina, colistina, nistatina (VCN) y ciprofloxacino contra micoplasmas de interés médico con la finalidad de valorar si no interfieren en su metabolismo, lo cual permita su aislamiento. Material y métodos: La concentración inhibitoria mínima fue determinada por el método de inhibición metabólica en microplacas de 96 pozos. Resultados: Se obtuvieron las concentraciones inhibitorias mínimas en las especies de micoplasmas evaluadas (µg/mL), para VCN (3.3, 7.5, 12.5) y ciprofloxacino (0.1-1 para Mycoplasma fermentans y Mycoplasma pneumoniae) y (1-10 para Mycoplasma penetrans). Conclusión: La viabilidad que presentaron los micoplasmas evaluados en presencia de estos compuestos permite considerar su adición al medio de cultivo cuando se requiera el aislamiento a partir de muestras clínicas.


REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

  1. Rivera TJA, Centeno TM, Santellan OR, Rodríguez PN. Prevalencia de Ureaplasma urealyticum en mujeres. Rev Mex Patol Clin 2004; 51: 33-36.

  2. Garza-Velasco R, Vilchis-Gaona EG, Calderón-Ozumbilla F. Vancomicina y fluorquinolonas: Dos armas que aún conservan su eficacia dentro del oscuro panorama que envuelve a la terapéutica antimicrobiana. Disponible en: http://depa.pquim.unam.mx/bacteriologia/pdfs/ART%CDC-vancofluorq.pdf

  3. Silva LE. Antifúngicos del futuro. Med Cutan Lat Am 2004; 32: 229-230.

  4. Ullmann U, Schubert S, Krausse R. Comparative in vitro activity of levofloxacin, other fluorquinolones, doxycycline and erythromycin against Ureaplasma urealyticum and Mycoplasma hominis. J Antimicrob Chemother 1999; 43 (suppl C): 33-36.

  5. Hooper DC. Expanding uses of fluorquinolones: opportunities and changes. Ann Inter Med 1998; 129: 908-910.

  6. Rivera-Tapia JA, Cedillo-Ramírez ML, Vega-Benítez M. Micoplasmas y su importancia médica. Rev Biomed 2001; 12: 262-271.

  7. Aldridge KE, Ashcraft D. Comparison of the in vitro activities of BAY 12-8039, a new quinolone, and other antimicrobials against clinically important anaerobes. Antimicrob Agents Chemother 1997; 41: 709-711.

  8. Woodcock J, Andrews JM, Boswell FJ, Brenwald NP, Wise R. In vitro activity of BAY 12-8039, a new fluorquinolone. Antimicrob Agents Chemother 1997; 41: 101-106.

  9. Bebear CM, Renaudin H, Boudjadja A, Bebear C. In vitro activity of BAY 12-8039, a new fluorquinolone, against mycoplasmas. Antimicrob Agents Chemother 1998; 42: 703-704.

  10. Pereyre S, Renaudin H, Bebear C, Bebear CM. In vitro activities of the newer quinolones garenoxacin, gatifloxacin, and gemifloxacin against human mycoplasmas. Antimicrob Agents Chemother 2004; 48: 3165-3168.

  11. Bebear CM, Renaudin H, Charron A, Gruson D, Lefrancois M, Bebear C. In vitro activity of trovafloxacine compared to those of five antimicrobials against mycoplasmas including Mycoplasma hominis and Ureaplasma urealyticum fluorquinolone-resistance isolates that have been genetically characterized. Antimicrob Agents Chemother 2000; 44: 2557-2560.

  12. Bebear CM, Renaudin H, Schaeverbeke T, Leblanc F, Bebear C. In-vitro activity of grepafloxacin, a new fluorquinolone, against mycoplasmas. J Antimicrob Chemother 1999; 43: 711-714.

  13. Taylor-Robinson D, Bebear C. Antibiotic susceptibilities of mycoplasmas and treatment of mycoplasmas infections. J Antimicrob Chemother 1997; 40: 622-630.

  14. Hayes MM, Foo HH, Timenetsky J, Lo SC. In vitro antibiotic susceptibility testing of clinical isolates of Mycoplasma penetrans from patients with AIDS. Antimicrob Agents Chemother 1995; 39: 1386-1387.

  15. Bebear CM, Renaudin H, Charron A, Bove JM, Bebear C, Renaudin J. Alterations in topoisomerase IV and DNA gyrase in quinolone-resistant mutants of Mycoplasma hominis obtained in vitro. Antimicrob Agents Chemother 1998; 42: 2304-2311.

  16. Bebear CM, Renaudin J, Charron A, Renaudin H, Barbeyrac B, Schaeverbeke T, Bebear C. Mutation in the gyrA, parC, and parE genes associated with fluorquinolone resistance in clinical isolates of Mycoplasma hominis. Antimicrob Agents Chemother 1999; 43: 954-956.

  17. Bebear CM, Bove JM, Bebear C, Renaudin J. Characterization of Mycoplasma hominis mutations involved in resistance to fluorquinolone. Antimicrob Agents Chemother 1997; 42: 269-273.

  18. Muñoz-Bellido JL, Alonzo-Manzanares M, Martinez-Andres JA, Gutierrez Zufiaurre MN, Ortiz G, Segovia HM, Garcia RJA. Efflux pump-mediated quinolone resistance in Staphylococcus aureus strains wild type for gyrA, gyrB, grlA, and norA. Antimicrob Agents Chemother 1999; 43: 354-356.

  19. Piddock LJV, White DG, Gensberg K, Pumbwe L, Griggs DJ. Evidence for an efflux pump mediating multiple antibiotic resistance in Salmonella enterica serovar Typhimurium. Antimicrob Agents Chemother 2000; 44: 3118-3121.

  20. Raherison S, Gonzalez P, Renaudin H, Charron A, Bebear C, Bebear CM. Increased expression of two multidrug transporter-like genes is associated with ethidium bromide and ciprofloxacin resistance in Mycoplasma hominis. Antimicrob Agents Chemother 2005; 49: 421-424.

  21. Kenny G, Cartwright FD. Susceptibilities of Mycoplasma hominis, M. pneumoniae, and Ureaplasma urealyticum to GAR-936, dalfopristin, dirithromycin, evernimicin, gatifloxacin, linezolid, moxifloxacin, quinupristin-dalfoprisitn, and telithromycin compared to their susceptibilities to reference macrolides, tatracyclines, and quinolones. Antimicrob Agents Chemother 2001; 45: 2604-2608.

  22. Duffy LB, Crabb D, Searcey K, Kempf MC. Comparative potency of gemifloxacin, new quinolones, macrolides, tetracycline and clindamycin against Mycoplasma spp. J Antimicrob Chemother 2000; 45: 29-33.




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