1998, Número 2
Efecto antiinflamatorio del líquido amniótico en el pulmón de ratas inoculadas intratraquealmente con sílice
Carvajal de la FV, López MA, Martínez BJ, Barrón VC, Loredo OJC
Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 30
Paginas: 147-153
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RESUMEN
El síndrome de aspiración de meconio representa un estado patológico de gran importancia para la medicina humana; sin embargo, es poco conocido en medicina veterinaria. En los últimos años se han realizado varias investigaciones con el fin de esclarecer la importancia y patogénesis de este síndrome en los animales domésticos. Estudios recientes han sugerido un posible efecto antiinflamatorio del líquido amniótico debido a que la aspiración de este líquido contaminado con queratina, la cual es un factor proinflamatorio, sólo induce una respuesta inflamatoria leve en el pulmón de becerros. El objetivo de esta investigación fue determinar si el líquido amniótico produce un efecto antiinflamatorio en los pulmones de ratas inoculadas intratraquealmente con sílice. Treinta y ocho ratas Wistar de 177 g en promedio se dividieron en cinco grupos. Cada grupo recibió vía intratraqueal diferentes dosis de líquido amniótico y solución salina fisiológica (0,0.125, 0.250, 0.375 y 0.5 ml, respectivamente) y cantidades constantes de sílice (5 mg/ml). Los animales inoculados se sacrificaron a las 72 horas posinoculación y se realizaron lavados broncoalveolares. Se realizó la cuenta total de células nucleadas por ml de lavado, así como el porcentaje y cuenta absoluta de neutrófilos y macrófagos. La inoculación con sílice y líquido amniótico indujo un marcado incremento en la cuenta total de células nucleadas y en el número de neutrófilos (P ‹ 0.01) en los grupos tratados respecto del testigo. El incremento se mostró como una función directa del volumen de líquido amniótico inoculado. Sin embargo, se concluyó que el líquido amniótico no tuvo un efecto antiinflamatorio en el pulmón de ratas inoculadas intratraquealmente con sílice.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Brady JP, Goldman S. Management of meconium aspiration syndrome. In: Thibeault DW, Gregory GA, editors. Neonatal pulmonary care. 2nd ed. Norwalk (CO): Appleton-Century-Crofts, 1986:483-498.
Dooly SL, Pesavento D, Deep R, Socol M, Tamura R, Wiringa K. Meconium below the vocal cords at delivery: correlation with intrapartum events. Am J Obstet Gynecol 1985;153:767-770.
Duenhoelter JH, Pritchard J. Fetal respiration: quantitative measurements of amniotic fluid inspired near term by human and Rhesus fetuses. Am J Obstet Gynecol 1976;125:306-309.
Gregory GA, Gooding C, Phibbs R, Tooley W. Meconium aspiration in infants-a prospective study. J Pediatr 1974;85:848-852.
Lopez A, Bildfel R. Pulmonary inflammation associated with aspirated meconium and epithelial cells in calves. Vet Pathol 1992;29:104-111.
Miller RB. A summary of some of the pathogenetic mechanisms involved in bovine abortion. Can vet J 1977;18:87-95.
Dawes GS, Patrick J. Fetal breathing activity. In: Nelson GH, editor. Pulmonary development: transition of intrauterine to extrauterine life. New York: Marcel Decker, 1985:75-97.
Vyas H, Milner AD. Pulmonary disease of the newborn. In: Robertson NRC, editor. Textbook of neonatology. New York: Churchill Livingston, 1986:317-318.
Tyler DC, Murphy J, Cheney F. Mechanical and chemical damage to lung tissue caused by meconium aspiration. Pediatrics 1978;62:454-459.
Besser TE, Szenci O, Gay C. Decreased colostral immunoglobulin absorption in calves with postnatal respiratory acidosis. Am J Vet Med Assoc 1990;196:1239-1243.
Lopez A, Lofstedt J, Bildfell R, Horney B, Burton S. Pulmonary histopathologic findings, acid-base status, and absorption of colostral immunoglobulins in newborn calves. Am J vet Res 1994;55:1303-1308.
Hunninghake G, Gadek J, Kawanami O, Ferrans V, Crystal R. Inflammatory and immune processes in the human lung in health and disease. Evaluation by bronchoalveolar lavage. Am J Pathol 1979;97:149-206.
Lopez A, Yong S. Injury versus inflammatory response in the lungs of rats intratracheally inoculated with bacterial lipopolysaccharide. Am J Vet Res 1986;47:1287-1292.
Lopez A, Yong S, Sharma A, Prior M. Effect of vehicular volume on the early pulmonary injury and inflammatory response in rats inoculated intratracheally with silica. Am J Vet Res 1987;48:1282-1285.
Pritchard JN, Holmes A, Evans J. The distribution of dust in the rat lung following administration by inhalation and by single intratracheal instillation. Environ Res 1985;36:268-297.
Witschi HP, Hakkinen P. The role of toxicological interactions in lung injury. Environ Health Perspect 1984;55:139-148.
Cohen A, Batra G. Bronchoscopy and lung lavage induced bilateral pulmonary neutrophil influx and blood leukocytosis in dogs and monkeys. Am Rev Resp Dis 1980;122:239-247.
Nicholson JW, Kinkead E. A simple device for intratracheal injections in rats. Lab Anim Sci 1982;32:509-510.
Martinez-Burnes J, Lopez A, Merino-Moncada M, Ochoa GP, Mondragon I. Pulmonary recruitment of neutrophils and bacterial clearance in mice inoculated with aerosols of Pasteurella haemolytica and Staphylococcus aureus. Can J Comp Med 1984;49:327-332.
Glantz SA. Primer of biostatistics. 3rd ed. New York: McGraw-Hill, 1992.
McCullagh P, Nelder JA. Generalized linear models. New York: Chapman and Hall, 1983.
Lehmann EL. Testing statistical hypotheses. 2nd ed. New York: Springer Verlag, 1997.
Henderson R, Lowrey J. Effect of anesthetic agents on lavage fluid parameters used as indicator of pulmonary injury. Lab Anim Sci 1983;33:60-62.
Lopez A, Yong S, Sharma A, Bailey D. Effect of sex, age, number of bronchoalveolar lavages and quantitation methods on the bronchoalveolar cell counts in rats. Can J Vet Res 1986;50:101-105.
Mauderly JL. Bronchopulmonary lavaged lung cells. Am J Vet Res 1985;46:547-553.
Morgan A, Moores SR, Holmes A. The effect of quartz, administered by intratracheal instillation on rat lung. I. The cellular response. Environ Res 1980;22:1-12.
Beck BD, Brain JD, Bohannon DE. An in vivo hamsters bioassay to assess the toxicity of particulates for the lung. Toxicol Appl Pharmacol 1982;66:9-29.
Damiano V, Cohen A, Tsang A, Batra G, Petersen R. A morphologic study of the influx of neutrophils into dog lung alveoli after lavage with sterile saline. Am J Pathol 1980;100:349-354.
Mordelet-Dambrine M, Arnoux A, Stanislas-Lequern G, Sandron D, Chretien J, Huchon G. Processing of lung lavage fluid causes variability in bronchoalveolar cell count. Am Rev Resp Dis 1980;130:305-306.
Davis G, Giancola M, Constanza M, Low R. Analysis of sequential bronchoalveolar lavage samples from healthy human volunteers. Am Rev Resp Dis 1982;126:611-616.