2006, Número 4
Siguiente >>
Vet Mex 2006; 37 (4)
Patrón de alimentación de mosquitos (Diptera:Culicidae) transmisores del virus del Oeste del Nilo, recolectados sobre caballos y humanos en el norte de México
Reyes-Villanueva F, Barrientos-Lozano L, Rodríguez-Pérez MA
Idioma: Español/Inglés
Referencias bibliográficas: 33
Paginas: 407-415
Archivo PDF: 221.05 Kb.
RESUMEN
El patrón nocturno de alimentación de mosquitos asociado con la dinámica de transmisión de virus en animales domésticos y sil-vestres en el norte de México no se conoce. El objetivo de este estudio fue determinar dicho patrón con el uso de trampa cebada con caballo y humano, en una granja agrícola del área metropolitana de Monterrey, Nuevo León, México, donde ya se detectaron equinos y diversas especies de aves positivas al virus del Oeste del Nilo. La recolección de mosquitos se efectuó durante diez días sucesivos, a partir de las 18:00 h y fi nalizando a las 06:00 h del día siguiente en junio y julio de 2002. Se recolectaron 9 196 mosquitos de 13 especies. Las seis especies de mosquitos más abundantes fueron:
Culex coronator,
Cx. quinquefasciatus,
Aedes vexans,
Cx. tarsalis,
Ochlerotatus sollicitans y
Oc. taeniorhynchus. El patrón alimentario de estos mosquitos, recolectados en caballo y humano, se caracterizó por un pico de actividad crepuscular y otro de media noche. Los hallazgos sugieren que las especies de mosquitos más abundantes, que se alimentan durante la tarde-noche, pudieran estar involucradas en la transmisión de arbovirus en animales domésticos y silvestres y, eventualmente, pudieran pasar la infección a humanos.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
.Reyes-Villanueva F, Badii MH, Rodriguez-Tovar ML, Villarreal-Leal ML. Oviposition of Toxorhynchites theobaldi in different types of artifi cial containers in Mexico. J Am Mosq Control Assoc 1987; 3: 651-654.
Arredondo-Bernal MC, Reyes-Villanueva F. Diurnal pattern and behavior of oviposition of Toxorhynchites theobaldi in the fi eld. J Am Mosq Control Assoc 1989; 5: 25-28.
Rodriguez-Perez MA, Gonzalez-Hernandez A, Reyes-Villanueva F. Observations on the fl ight and mating behavior of Anopheles pseudopunctipennis under insec-tary conditions. J Am Mosq Control Assoc 1991; 7: 316-318.
Mercado-Hernandez R, Fernandez-Salas I, Villarreal-Martinez H. Spatial distribution of the larval indices of Aedes aegypti in Guadalupe, Nuevo Leon, Mexico, with circular distribution analysis. J Am Mosq Control Assoc 2003;19: 15-18.
Bennett KE, Olson KE, Muñoz M de L, Fernandez-Salas I, Farfan-Ale JA, Higgs S et al. Variation in vector competence for dengue 2 virus among 24 collections of Aedes aegypti from México and the United States. Am J Trop Med Hyg 2002; 67: 85-92.
Ordonez-Gonzalez JG, Mercado-Hernandez R, Flores-Suarez AE, Fernandez-Salas I. The use of sticky ovitraps to estimate dispersal of Aedes aegypti in northeastern Mexico. J Am Mosq Control Assoc 2001; 17: 93-97.
Gorrochotegui-Escalante N, Muñoz ML, Fernan-dez-Salas I, Beaty BJ, Black WC. Genetic isolation by distance among Aedes aegypti populations along the northeastern coast of Mexico. Am J Trop Med Hyg 2000; 62: 200-209.
Reyes-Villanueva F, Rodriguez-Perez MA. The logistic model for predicting the non-gonoactive Aedes aegypti females. Salud Publica Mex 2004; 46: 234-240.
Eads RB, Campos EG. Mosquitoes collected in the Mexican states of Tamaulipas and San Luis Potosi. Mosq News 1963; 23: 45-48.
King WV, Bradley GH, Smith CN, McDuffi e WC. A Handbook of the Mosquitoes of the southeastern United States. Agriculture Handbook No. 173. Wash-ington, D C: USDA-ARS, 1960.
Darsie RF, Ward RA. Identifi cation and geographi-cal distribution of the mosquitoes of North America, North Mexico. Mosq Syst Suppl 1981; 1:1-313.
Blitvich BJ, Fernandez-Salas I, Contreras-Cordero JF, Lorono-Pino MA, Marlenee NL, Díaz FJ et al. Phylo-genetic analysis of West Nile virus, Nuevo Leon State, Mexico. Emerg Infect Dis 2004; 10: 1314-1317.
Blitvich BJ, Fernandez-Salas I, Contreras-Cordero JF, Marlenee NL, Gonzalez-Rojas JI, Komar N et al. Sero-logic evidence of West Nile virus infection in horses, Coahuila State, Mexico. Emerg Infect Dis 2003; 9: 853-856.
Fernandez-Salas I, Contreras-Cordero JF, Blitvich BJ, Gonzalez-Rojas JI, Cavazos-Alvarez A, Marlenee NL et al. Serologic evidence of West Nile Virus infection in birds, Tamaulipas State, Mexico. Vector Borne Zoo-notic Dis 2003; 3: 209-213.
Sudia WD, Newhouse VF, Henderson BE. Experimen-tal infection of horses with three strains of Venezue-lan equine encephalomyelitis virus. II. Experimental vector studies. Am J Epidemiol 1971: 93: 206-211.
Instituto Nacional de Estadística, Geografía e Infor-mática. Carta Geográfi ca del Estado de Nuevo León. México (DF): Secretaría de Programación y Presu-puesto, Gobierno Federal, 1986.
Vargas L, Martinez-Palacios A. Culex coronator mooseri n subsp. from Mexico. Rev Inst Salubr Enf Trop 1954; XIV: 33-37.
Forattini OP. Entomologia Médica. Sao Paulo, Brasil: Fac. Higiene e Saúde Pública da USP, São Paulo. 1965: 506
Hernandez DA, Salman MD, Francy DB, Mason J. Estudio entomológico en una región ganadera en el Istmo de Tehuantepec. Biomédica 1994; 25: 159-162.
Barbosa AA, Navarro-Silva MA, Calado D. Atividade de Culicidae em remanescente fl orestal na região urbana de Curítiva (Paraná, Brasil). Rev Bras Zool 2003; 20: 59-63.
Ferreira RLM, Oliveira AF, Pereira ES, Hamada N. Occurrence of larval Culicidae (Diptera) in water retained in Aquascypha hydrophora (Fungus: Steraceae) in Central Amazúnia, Brazil. Mem Inst Oswaldo Cruz 2001; 96: 1165-1167.
Navarro JC. Fauna de mosquitoes (Diptera: Culicidae) del Parque Nacional Cerro El Copey y nuevos regis-tros para la Isla de Margarita, Venezuela. Bol Entomol Venez 1998; 13: 187-194.
Bertram DS. Mosquitoes of British Honduras, with some comments on malaria, and in arbovirus anti-bodies in man and equines. Trans R Soc Trop Med Hyg 1971; 65: 742-762.
Reisen WK, Luthrop HD, Meyer RP. Time of host-seeking by Culex tarsalis (Diptera: Culicidae) in Cali-fornia. J Med Entomol 1997; 34: 430-437.
Lee JH, Rowley WA, Platt KB. Longevity and sponta-neous fl ight activity of Culex tarsalis (Diptera: Culici-dae) infected with Western Equine Encephalomyelitis Virus. J Med Entomol 2000; 37: 187-193.
Reinert JF. New classifi cation for the composite genus Aedes (Diptera:Culicidae:Aedini), elevation of subge-nus Ochlerotatus to generic rank, reclassifi cation of the other subgenera, and notes on certain subgenera and species. J Am Mosq Control Assoc 2000; 16: 175-188.
Turell MJ, Jones JW, Sardelis MR, Dohm DJ, Coleman RE, Watts DM et al. Vector competence of Peruvian mosquitoes (Diptera: Culicidae) for epizootic and enzootic strains of Venezuelan equine encephalomy-elitis virus. J Med Entomol 2000; 37: 835-839.
Travassos Da Rosa APA, Vasconcelos PFC, Rodrigues SG, Travassos Da Rosa JFS. Manual de procedimentos técnicos para coleta de amostra e diagnóstico labo-ratorial das encefalomielites eqüinas. Belém: Labo-ratório de Arbovírus do Instituto Evandro Chagas; 1992
Turell MJ, O’Guinn ML, Dohm DJ, Jones JW. Vector competence of North American mosquitoes (Diptera: Culicidae) for West Nile Virus. J Med Entomol 2001; 38: 130-134.
Harwood RF, James MT. Entomology in Human and Animal Health. 7th ed. New York. MacMillan Publish-ing Co Inc 1979. 548 pp.
DeFoliart GR, Watts DM, Grimstad PR. Changing pat-terns in mosquito-borne arboviruses. J Am Mosq Con-trol Assoc 1986; 2: 437-455.
Sudia WD. Arthropod Vectors of Epidemic Venezue-lan Equine Encephalitis, Pan American Health Orga-nization Washington D C: Science Publication 243, 1972: 157-169.
Sudia WD, Newhouse VF. Epidemic Venezuelan equine encephalitis in North America: A summary of virus-vector-host relationships. Am J Epidem 1975; 101:1-13.