2024, Número 3
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Otorrinolaringología 2024; 69 (3)
Efecto del factor neurotrófico derivado del cerebro en la regeneración del nervio facial posneurorrafia
Cristerna SL, Brulé ACD, Olmos ZJR, Silva MM, Gomes-da Silva RP, Gaxiola GM, Romero RLP
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 21
Paginas: 163-174
Archivo PDF: 857.82 Kb.
RESUMEN
Objetivo: Evaluar los cambios clínicos, macroscópicos e histológicos y en la expresión
de la proteína básica de mielina y proteína ácida fibrilar glial posneurorrafia
del facial combinada con la aplicación de factor neurotrófico derivado del cerebro o
colocación de un injerto de nervio sural en cobayos.
Materiales y Métodos: Estudio experimental, prospectivo, longitudinal
y comparativo, efectuado en la Unidad de Trasplante Pulmonar Experimental del
Instituto Nacional de Enfermedades Respiratorias Ismael Cosío Villegas, Ciudad de
México. En 18 cobayos, divididos en 3 grupos de 6 cada uno, se practicó neurorrafia
del nervio facial izquierdo y recibieron el siguiente tratamiento: grupo I: neurorrafia
sin tratamiento; grupo II: colocación de injerto del nervio sural sin tratamiento y
grupo III: neurorrafia y factor neurotrófico derivado del cerebro. El estudio duró
12 semanas y se evaluó el cierre palpebral, movimientos de los bigotes, infección,
necrosis, adherencias y fibrosis de la anastomosis. El estudio se llevó a cabo del 1
de enero de 2022 al 31 de enero de 2023.
Resultados: El grupo III mostró mejor evolución clínica en menor tiempo, menor
fibrosis macroscópica y microscópica, mejor regeneración axonal y neovascularización.
Los 3 grupos mostraron expresión similar de proteína básica de mielina y proteína
ácida fibrilar glial.
Conclusiones: La neurorrafia del facial en cobayos combinada con la aplicación del factor neurotrófico derivado
del cerebro disminuye el grado de parálisis facial en menor tiempo y favorece la cicatrización del nervio facial
con menor fibrosis, mejor regeneración axonal que la cicatrización obtenida con la neurorrafia sin tratamiento y
con la colocación de injerto de nervio sural sin tratamiento, pero no origina cambios en la producción de proteína
básica de mielina y proteína ácida fibrilar glial.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Ho ML, Juliano A, Eisenberg EL, Moonis G. Anatomy and pathology of the facial nerve. AJR Am J Roentgenol 2015; 204: W612-9. doi: 10.2214/AJR.14.13444
León Rojas DE, León Rodríguez SN, Gutiérrez Ortega FH, Torres Criollo LM. Parálisis facial. En: TorresCriollo LM, Álvarez Ochoa RI, Pérez Ramírez JE. Medicina de Urgencias Tomo 2. 1ª ed. Puerto Madero. LaPlata, Argentina, 2022: 173-183.
Sebben AD, Lichtenfels M, da Silva JL. Peripheral nerve regeneration: cell therapy and neurotrophic factors.Rev Bras Ortop 2015; 46 (6): 643-9. doi: 10.1016/S2255-4971(15)30319-0
Estados Unidos Mexicanos. AFÍA. Especificaciones Técnicas para la Producción, Cuidado y Uso de Animalesde Laboratorio de la Norma Oficial Mexicana NOM-062-ZOO-1999. Diario Oficial de la Federación 6 dic, 1999.
National Institutes of Health USA. Guía para el Cuidado y Uso de los Animales de Laboratorio. Departmentof Health and Human Services, Public Health Service, National Institutes of Health USA. Edición mexicanaauspiciada por la Academia Nacional de Medicina. México, 2002.
Dew LA, Shelton C. Iatrogenic facial nerve injury: prevalence and predisposing factors. Ear Nose Throat J1996; 75 (11): 724-9.
Kilkenny C, Browne WJ, Cuthill IC, Emerson M, Altman DG. improving bioscience research reporting: The ARRIVEGuidelines for Reporting Animal Research. PLoSBiol 2010; 8 (6): e1000412. doi:10.1371/journal.pbio.1000412
Veiga A, Rendal M, Matheu G, Andión C, et al. Cambios histopatológicos en arterias humanas sometidas a procesosde isquemia fría y criopreservación. Angiología 2004; 56 (2): 97-105. DOI: 10.1016/S0003-3170(04)74854-3
Zamzam, SM, Hassouna MS, Elsawy MK, Gafaar SH. Correction: Otolaryngologists and iatrogenic facialnerve injury: a meta-analysis. Egypt J Otolaryngol 2023; 39: 85. https://doi.org/10.1186/s43163-023-00450-y
Prats Golczer VE. Efectividad del tratamiento rehabilitador en pacientes con parálisis del nervio facial postparotidectomíay su impacto en la calidad de vida. Tesis Doctoral. Universidad de Sevilla, Sevilla, España, 2015.
Myckatyn TM, Mackinnon SE. The surgical management of facial nerve injury. Clin Plast Surg 2003; 30(2): 307-318. doi: 10.1016/s0094-1298(02)00102-5
Rovak JM, Tung TH, Mackinnon SE. The surgical management of facial nerve injury. Semin Plast Surg.2004; 18(1): 23-30. doi: 10.1055/s-2004-823120
Cui Y, Lu C, Meng D, et al. Collagen scaffolds modified with CNTF and bFGF promote facial nerve regenerationin minipigs. Biomaterials 2014; 35 (27): 7819-27. doi: 10.1016/j.biomaterials.2014.05.065
Shi ZL, Fan ZY, Zhang H, Li ST, et al. Localized delivery of brain derived neurotrophic factor from PLGAmicrospheres promotes peripheral nerve regeneration in rats. J Orthop Surg Res 2022; 17 (1): 172. https://doi.org/10.1186/s13018-022-02985-x
Daradka MH, Bani Ismail ZA, Irsheid MA. Peripheral nerve regeneration: A comparative study of the effectsof autologous bone marrow-derived mesenchymal stem cells, platelet-rich plasma, and lateral saphenousvein graft as a conduit in a dog model. Open Vet J 2021; 11 (4): 686-694. doi: 10.5455/OVJ.2021.v11.i4.20
García Medrano B. Regeneración de las lesiones críticas del nervio periférico con factores de crecimiento.Estudio experimental. Tesis Doctorado. Universidad de Valladolid. Valladolid, España, 2013.
Fletcher JL, Murray SS, Xiao J. Brain-derived neurotrophic factor in central nervous system myelination: A newmechanism to promote myelin plasticity and repair. Int J Mol Sci 2018; 19 (12): 4131. doi: 10.3390/ijms19124131
Moir MS, Wang MZ, To M, Lum J, Terris DJ. Delayed repair of transected nerves: effect of brain-derivedneurotrophic factor. Arch Otolaryngol Head Neck Surg 2000; 126 (4): 501-505. doi: 10.1001/archotol.126.4.501
Yang Z, Wang KK. Glial fibrillary acidic protein: from intermediate filament assembly and gliosis to neurobiomarker.Trends Neurosci 2015; 38 (6): 364-374. doi: 10.1016/j.tins.2015.04.003
Triolo D, Dina G, Lorenzetti I, et al. Loss of glial fibrillary acidic protein (GFAP) impairs Schwann cell proliferationand delays nerve regeneration after damage. J Cell Sci 2006; 119 (Pt 19): 3981-3993. doi: 10.1242/jcs.03168
Jessen KR, Mirsky R. The repair Schwann cell and its function in regenerating nerves. J Physiol 2016; 594(13): 3521-3531. doi: 10.1113/JP270874