Vidal AR, Aspé E, Urrutia H

Idioma: Ingles.
Referencias bibliográficas: 22
Paginas: 177-180
Archivo PDF: 46.64 Kb.

RESUMEN

La competencia entre bacterias metanógenas (BPM) y bacterias sulfato reductoras (BRS) por el acetato e hidrógeno ha sido un factor limitante en el proceso de la digestión anaeróbica. Desde que se demostró que las BPM tienen una mayor capacidad para adherirse a superficies, la inmovilización de esas bacterias sobre soportes puede ser un método para favorecer su presencia. Este trabajo estudió la formación de biofilms por grupos tróficos de BPM y BRS sobre soportes de material cerámico y polietileno. Los resultados sugieren que las BPM hidrogenotróficas alcanzó velocidades de crecimiento sobre cerámica de 0.061 h -¹ y sobre polietileno de 0.030 h -¹ , con cuentas de 5.5 x 10⁷ Número Más Probable (MPN) ml -¹ sobre cerámica y 1.1 x 10⁸ MPN ml -¹ sobre polietileno. Esos valores fueron significativamente más altos que los de otros grupos tróficos metanógenos que fueron estudiados (acetótrofos, formatótrofos y metilaminótrofos). En todos los casos los BRS alcanzaron valores más bajos de la velocidad de crecimiento máxima que los BPM. Las ve locidades para acetotróficos BRS fueron 0.009 h -¹ sobre cerámica y 0.008 h -¹ sobre polietileno, con cuentas de 6.7 x 10⁶ MPN ml -¹ sobre cerámica y 4.2 x 10⁶ MPN ml -¹ sobre polietileno. Análisis estadístico demostró a esos valores ser significativamente más altos (p ‹ 0.05) que los valores para BRS hidrogenotróficos. En comunidades de BPM y BRS, las proporciones de sus respectivos niveles tróficos en suspensión (sin soporte) fueron diferentes de los observados en sistemas que contienen soportes, sobre los cuales formaron biofilms. Se observó que BMP hidrogenotróficas y metilotróficas fueron las que se retuvieron mejor sobre cerámica y polietileno.

REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)

1. APHA. 1985. Standard methods for the examination of water and wastewater. 16th edition, American Public Health Assoc. Washington D.C.

2. Aspé, E., M. C. Martí and M. Roeckel. 1997. Anaerobic treatment of fishery wastewater using a marine sediment inoculum. Water Res. 31:2147-2160.

3. Aspé, E., M. Roeckel, M. Martí, M. Durán, and S. Fuentes. 1994. Actas del XI Congreso de Chileno de Ingeniería Química. 18-11 de Noviembre 1994. Universidad de Concepción. Chile

4. Balch, W. E., G. E. Fox, L. J. Magrum. C. R. Woese, and R. S. Wolfe. 1979. Methanogens: reevaluation of a unique biological group. Microbiol. Rev. 43:260-296.

5. Colleran, E., S. Finnegan, and P. Lens. 1995. Anaerobic treatment of sulfate containing waste streams Antonie van Leeuwenhoek 67:29-46.

6. Gibson, G. R. 1990. Physiology and ecology of the sulphate-reducing bacteria. J. Appl. Bacteriol. 69:769-797.

7. Isa, Z., S. Grusenmeyer, and W. Verstraete. 1986. Sulfate reduction relative to methane production in highrate anaerobic digestion: microbiological aspects. Appl. Environ. Microbiol. 51:580-587.

8. Kataoka, N., Y. Tokiwa and K. Takeda 1991. Improved technique for identification and enumeration of methanogenic bacteria colonies on roll tube by epifluorescence microscopy. Appl. Environ. Microbiol. 57:3671-3673.

9. King, G. M. 1988. Methanogenesis from methylated amines in a hypersaline algal mat. Appl. Environ. Microbiol. 54:130-136.

10. Lettinga, G. 1995. Anaerobic digestion and wastewater treatment systems. Antonie Van Leeuwenhoek 67:3-28.

11. Muñoz, M. A., J. M. Sanchez, J. M. Rodriguez-Maroto, M. A. Moriñigo and J. Borrego. 1994. Evaluation of the use of sepiolite to optimize the methanogenesis from anaerobic domestic sludges in laboratory conditions. Water Res. 28:195-200.

12. Ollivier, B., P. Caumette, J. E. García, and R. A. Mah. 1994. Anaerobic bacteria from hypersaline environments. Microbiol. Rev. 58:27-38.

13. Oren, A. 1990 Formation and breakdown of glycine betaine and trimethylamine in hypersaline environments. Antonie Van Leeuwenhoek 58:291-8.

14. Sharma, V. K., and P. N. Hobson. 1987. A convenient method for detecting sulfate-reducing bacteria. Lett. Appl. Microbiol. 5:9-10.

15. Sticker D. 1999. Biofilms. Curr. Opin. Microbiol. 2:270-275.

16. Urrutia H., R. Vidal, M. Baeza, J. Reyes, and E. Aspe. 1997. Growth of methylaminotrophic, acetotrophic and hydrogenotrophic bacteria isolated from anaerobic fermentors using artificial supports. Microbiología SEM. 13:209-240.

17. Veiga, M. C., R. Méndez, and J. M. Lema. 1992. In Melo, L.F., Bott, T.R., Fletcher, M. and Capdeville, B. (eds) Biofilms Science and Technology. Kluwer Academic Publishers (Netherlands), pp 421-434.

18. Vidal, G., E. Aspé, M. C. Martí, and M. Roeckel. 1997. Treatment of recycled wastewaters from fish meal factory by anaerobic filter. Biotechnol. Lett. 19:117.

19. Visser, A., I. Beeksma, F. Van Der Zee, A. J. Stams, and G. Lettinga. 1993. Anaerobic degradation of volatile fatty acids at different sulphate concentrations. Appl. Environ. Biotech. 40: 549-556.

20. Wilkinson, L. 1990. Systat. The system for statistics. Evanston II: Systat, Inc.

21. Yoon, W. B. and R. A. Rosson. 1990. Improved method of enumeration of attached and free-living bacteria in response to a diel variations in seawater turbidity Appl. Environ. Microbiol. 56:595-600.

22. Zwietering, M. H., F. M. Rombouts and K. van't Riet 1992. Comparison of definitions of the lag phase and the exponential phase in bacterial growth. J. Appl. Bact. 72:139-145.